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最近一直在纯化HIS标签蛋白，用的是sf9细胞表达，老是出问题.。。。 已有1人参与
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实验室用的sf9细胞裂解液配方：20mM的Tris-cl(PH7.8), 0.5mM EGTA 1mM EDTA 1M Mgcl2 10%甘油 200mM 氯化钠 0.5% NP40 HIS-wash :50mM磷酸盐缓冲液（ph8.0） 500mM氯化钠 10%甘油 1%Triton-100 20mM咪唑 HIS-Elution:250mM咪唑，其他和WASH一样 对于sf9细胞裂解液里边为何同时加EDTA和镁离子，有点搞不懂。还有就是氯化钠的浓度是不是小？ 对于以上三种溶液可不可以加一些DTT或者β-巯基乙醇，浓度是多少呢？ 100ml的培养基离心后获得细胞加入了5ml裂解液（相应l体积的PMSF），超声裂解，冰上30min，离心得上清，用 2倍体积上清的wash buffer和上清混匀后，4度和beads孵育过夜（原300ml培养基得到的细胞，用1了ml的beads,少吗？） 20mM咪唑，250mM分别洗柱子，最后抗体，考然检测有些目的蛋白甚少（要纯化5亚基复合物，只有一个亚基带了HIS标签），是蛋白本身表达量少还是所用BUFFER不合适呢？ 还有就是如何确定这个多亚基蛋白的PI呢？ 折腾了一两个月了，被老板熊，，，，，哎 着急呀  。还请各位虫友支支招呀！！！！！！！！！@gyesang@hc-material |
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1.你没发电泳图，我们也不能判断是表达上的问题，还是纯化上的问题。 2.裂解液建议你用平衡BUF.加EDTA会影响镍柱的。 3.加DTT可以，万分之一就可以了。 4.1mlbeads的吸附量大概40mg蛋白。根据你的目标蛋白含量自己计算。 5.测蛋白的PI可以用双向电泳法。 祝顺利。 |
ivirus3楼2016-05-18 13:38:19
030Selma
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