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Netherland

金虫 (小有名气)

引用回帖:
5楼: Originally posted by 蓝冰天山 at 2013-10-07 19:12:28
上样量太大,减少上样量试试,如果是沉淀的话,是不是没有离心?

跑得上清  上样量已经很低了20ul
11楼2013-10-07 19:57:01
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蓝冰天山

银虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

引用回帖:
11楼: Originally posted by Netherland at 2013-10-07 19:57:01
跑得上清  上样量已经很低了20ul...

20ul不算少了,我们最多也就20ul,上个10ul试试,或者跑个梯度看看是不是上样量的问题。看其他条带还好应该不是胶的问题

[ 发自小木虫客户端 ]
12楼2013-10-07 20:18:45
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

引用回帖:
9楼: Originally posted by Netherland at 2013-10-07 19:55:46
跑了两次  胶也是重新做的  还是跑成这样  点样前都会沸水加热3分钟的...

1.样品应该充分溶解:保持各种蛋白质样品和Marker在上样前能够充分溶解,上样前最好离心一下,实在溶解不掉的颗粒就去掉。
2.SDS电泳带变宽,SDS电泳带与邻近蛋白质电泳相连。除了上样量过多和样品溶解不完全外,凝胶的加样孔泄露会使得电泳带变宽。加样孔泄露往往由于凝胶与玻璃板之间产生裂纹引起。对策:此时只能重新制备凝胶,梳子拔起时要小心等凝胶凝聚完毕,速度不宜过快,拔起的方向要垂直于凝胶表面;要避免凝胶两侧的玻璃板与凝胶之间产生裂纹,在凝胶制备过程中不要挤压凝胶两侧的玻璃板。
-----------这两条你并没有改进...这和你跑电泳的次数无关。

更正4楼:沸水浴是100度,不是110度。
13楼2013-10-07 21:16:55
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fuyuandj86

版主 (著名写手)

己所不欲,勿施于人

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你这是15%以上浓度的胶跑诱导表达15kDa左右的蛋白吧?
我觉得这太正常不过了~~~~我跑小于15kDa的蛋白从来都是这鬼样子
The doer of good becomes good, the doer of evil becomes evil.
14楼2013-10-07 21:51:03
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

引用回帖:
7楼: Originally posted by Netherland at 2013-10-07 19:53:08
可是上面部分条带显示浓度较低啊...

即使上面的条带浓度低,如果下面的浓度过高也会造成这种现象。这也是为什么经纯化的蛋白的上样量要比粗提少很多的原因。
15楼2013-10-07 23:05:53
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2008101111

金虫 (正式写手)

学术江湖混子

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
样品蛋白浓度过高,甚至出现不溶的蛋白颗粒,建议上样前加热后离心,同时稀释样品
自主创业者,捣腾生物试剂
16楼2013-10-08 15:00:47
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RUI1990

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
蛋白量过大就会出现上面的情况,将其稀释一下再试试。
做自己
17楼2013-10-08 15:14:03
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ndsc

铁虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
包涵体?样品浓度?还是标准品上太多了?!
18楼2013-10-08 17:40:21
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剑客心语

木虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

应该是上样量过大的原因,将样品稀释一下试试,我一般上样5~10ul。
一柄驻剑,一朝旅人,一颗常心,一生志言……行疆漫漫,品味一生……
19楼2013-10-12 16:24:13
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Allen206

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

蛋白溶解buffer是什么?目标浓度多少?不要煮沸试一下,换成tricine page try try
不想说什么,,,,
20楼2013-10-12 16:46:33
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