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jonew

木虫 (正式写手)

[求助] PCR求助

我的目的片段是3000,为什么我这几天p出来的都是1000的而且只有这一条带!!
酶也换过了,模板也换过了?梯度也做过了,我下一步应该怎么做?求各路?
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借口很贱,,,
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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 。 2013-09-22 21:28:50
引物好好检查下,看有无问题?
思路决定出路。。。
2楼2013-09-22 21:09:11
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jonew

木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by lmcyjxs at 2013-09-22 21:09:11
引物好好检查下,看有无问题?

谢谢
借口很贱,,,
3楼2013-09-23 09:48:29
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iayala

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
使用NCBI的primer-BLAST好好检测一下你的引物设计!
另外,有时候,点赶上了,说不定模板真的缺失突变了。如果你很急,就好好分析下你的模板在遗传上有没有什么特殊性,我就遇到过target gene两侧带IS element的,呵呵,希望有帮助!
4楼2013-09-23 11:14:21
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RUI1990

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
引物出问题的可能性很大,再检查一下模板质粒!祝好运!
做自己
5楼2013-09-23 11:35:33
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匿名

用户注销 (正式写手)

感谢参与,应助指数 +1
本帖仅楼主可见
6楼2013-09-24 11:58:43
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
jonew: 金币+5 2013-09-25 11:59:31
楼主的情况是:PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致。

我在2013年9月24日对此问题的总结如下,楼主可以参考:

    PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带,其原因与对策如下:一、引物与靶序列不完全互补、 或引物聚合形成二聚体、或者GC比邻远离50%。对策:重新设计引物。二、Mg2+ 离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数 过多有关。
三、靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:
1.整个基因组或大片段的交叉污染,导致非特异性带出现。这种非特异性带出现可用以下方法解决:(1)在加样枪的接头和吸杆之间加上脱脂消毒棉花,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。(2)除了酶及不能耐高温的物质外,所有试剂或器材均应高压消毒。(3)所用离心管及样进枪头等均应一次性使用。必要时,在加标本前,反应管和试剂用紫外线照射,以破坏存在的核酸。(4)重新提取模板DNA。2.空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。有时候可能会互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致非特异性带出现的产生。虽然这样的可能性比较小。对策:实验前对实验室充分通风,试验时尽量加上PCR试剂暴露于空气中的时间,还可用巢式PCR方法来减轻或消除空气中的小片段核酸造成的污染,最基本的解决办法:重新提取模板DNA。
四、考虑使用热启动模式。可以购买商用的PCR热启动酶,也可以用石蜡隔离模式。
五、调整变性和退火温度时间。
六、更换所有缓冲溶液,使用全部新配的缓冲溶液。这点可能太基本了,很不被重视。
七、适当调高复性温度。没有重新设计引物,不要大范围地变动反应体系的复性温度,要在引物的Tm少5-10度的范围内变动。如果出现非特异性扩增,则把在引物的Tm少5-10度的范围内把复性温度提高1-3度;如果出现任何扩增带,则把在引物的Tm少5-10度的范围内把复性温度降低1-3度。
八、Taq酶的专一性扩增不够。往往一些来源的DNA聚合酶易出现非特异条带而另一来源的酶 则不出现,酶量过多有时也会出现非特异性扩增。其对策:改用专一性更强的DNA聚合酶,或者使用两种不同的DNA聚合酶,减低酶量或调换另一来源的专一性高的酶。更换DNA聚合酶时,酶量不要太大,以免出现特异性扩增。    酶制剂中的甘油可能也是干扰因素。可以加入反应体系之前用超滤去除酶制剂中的甘油。
九、使用梯度降低PCR。在以基因组DNA为模板进行PCR扩增时,非特异性扩增较多,这时,最初的退火温度选用比Tm高5-10度。然后每隔1个循环,退火温度降低1-2度,直至到达正常的Tm附近的退火温度。
十、适当减低的dNTP的浓度,可以分梯度进行。
   一般的调整顺序(不是绝对的):若PCR反应后无任何产物,可先调整Mg2+ 浓度,Mg2+ 浓度不高于10.0mmol/L,不低于1.0mmol/L,调整时从低往高分梯度加,每次升高0.05mmol/L.最常使用Mg2+ 浓度为1.5mmol/L。同时全部重新配所有的缓冲溶液。 然后调整引物浓度,在调整引物与模板的结合温度,调整变性和退火温度时间。接着或者与引物调整同时,把酶换成其他类型的DNA聚合酶(高保真酶或者热启动酶)。再往后,检测和重新提取DNA模板(包括用质谱或者电泳检测DNA是否变短,清除酚和SDS,检测模板浓度,必要时要对DNA模板测序)。再往后和使用梯度降低dNTP。最后这些都做了仍未奏效,那么就要重新设计引物了。一般是最先调整Mg2+ 浓度,最后重新设计引物,其他顺序可变。Mg2+ 浓度与dNTP的浓度一般同方向偶联调节。
十一、适当减少退货时间和提高退火温度。
十二、在反应体系中加入:1.5mol/L的甜菜碱或者5%的DMSO可以提高PCR扩增效率。
  过去,我也回答过PCR非特异性扩增的问题,但是这次回答我在2013年8月14日重新编辑核对的。
十三、使用巢式PCR。
7楼2013-09-24 12:23:22
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

楼主可以参考:
John M.S.Bartlett and David Stirling, PCR Protocols(second Edition)-MMB-226

http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=6385666

不要对我说无法下载,我没有设定任何限制,无法下载请换台电脑下载。我没有时间一一发送文件,见谅!
8楼2013-09-24 12:27:50
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