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【分享】焦磷酸测序原理及实验流程
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原理简介: 1.测序引物与单链,PCR扩增的DNA模板相结合。然后将其与DNA聚合酶、ATP硫酸化酶、荧光素酶和三磷酸腺苷双磷酸酶,以及底物APS和荧光素一起孵育。 2.四种dNTP(dATP,dTTP,dCTP,dGTP)之一被加入反应体系,如与模扳配对(A—T,C—G),此dNTP与引物的末端形成共价键,dNTP的焦磷酸基团(PPi)释放出来。而且释放出来的Ppi的量与和模板结合的dNTP的量成正比。 3.ATP sulfurylase在adenosine 5´ phosphosulfate存在的情况下催化PPi形成ATP,ATP驱动luciferase介导的Luciferin向oxyluciferin的转化,oxyluciferin发出与ATP量成正比的可见光信号。光信号由CCD摄像机检测并由pyrogram™反应为峰。每个光信号的峰高与反应中掺入的核苷酸数目成正比。 4.ATP和未掺入的dNTP由Apyrase降解,淬灭光信号,并再生反应体系。 5.然后加入下一种dNTP。最终待测序列顺序,即可从反应光强的信号峰中读出。在此过程之中有几点值得注意的是,在体系中使用的是dATP S而非dATP,因为dATP S不是荧光素酶的底物,而且DNA聚合酶对dATP S的催化效率更高。而且在系统之中,底物的浓度已经最佳化,使得dNTP的降解速度慢于它的掺入速度,ATP的合成速度快于水解速度,其中三磷酸腺苷双磷酸酶的特异浓度,可以保证降解完全,使系统复原。 实验流程: 1.在使用前,保证所有试剂都达到室温; 2.在PSQ 96板中预先加入45μl含有0.3μM测序引物的annealing buffer; 3.使用Vertex混匀Sepharose beads; 4.将需要使用的sepharoe beads总量(每样本3μl)转移到一个Eppendorf管中; 5.在sepharose bead中加入binding buffer,使得平均每个样品约有50μl的体积,将混合物混匀; 6.将以上混合物加入PCR产物(50μl反应体积)中,每样本50μl; 7.将PCR产物在常温下混匀10分钟,使得beads与生物素结合,对于较长片段,可适当延长混匀时间; 8.在Vacuum prep workstation中,四个样品板中依次加入180ml高纯水、70%乙醇、washing buffer和120ml Denaturation buffer; 9.打开vacuum prep workstation的泵,将vacuum prep tool在高纯水中清洗30s; 10.然后将vacuum prep tool移到PCR板中,抓取sepharose beads; 11.拿起PCR板,检查是否大部分beads都被吸附在了vacuum prep tool上; 12.将vacuum prep tool放入70%乙醇中5s; 13.然后移到denatureation buffer中5s; 14.再移到washing buffer中清洗5-10s;关掉泵; 15.将vacuum prep tool放入含有测序引物的板中,摇动,释放sepharose beads; 16.使用高纯水清洗vacuum prep tool; 17.将放有样品的PSQ 96板放在ThermoPlate上加热到80℃ 2分钟,再冷却到室温,即可进行Pyrosequencing反应。 |
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