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[交流] 实验动物知识!心脏灌流什么时候非做不可?

一、判断是否开展心脏灌流的标准?
血液中的血红蛋白、红细胞、白细胞,会对后续检测产生多重干扰。血红蛋白在可见光区域吸收能力强,还会自发产生荧光,拉高荧光染色背景;组织内源性过氧化物酶、生物素会带来免疫组化的非特异性着色,产生假阳性结果;血液残留还会增强组织自发荧光。简单总结:对血液残留敏感的实验,强烈建议进行心脏灌流;血液影响较小的实验可以省去这一步骤。

二、哪些情况必须要进行心脏灌流操作?
第一类是脑组织取材,尤其是后续要开展免疫染色的实验。脑组织血管密度极高,动物死亡之后血脑屏障会快速崩解,红细胞溢出,形成难以消除的背景污染。这里需要区分清楚:灌流主要影响依赖抗体、荧光信号的检测;HE染色、尼氏染色、镀银、髓鞘染色、高尔基染色这类传统组织学染色,血液残留干扰有限,不灌流一般也可以完成观察。 
第二类是免疫荧光(IF)与免疫组化(IHC)实验。这类实验需要抗体孵育,血液里面的内源性过氧化物酶、生物素、Fc受体,都会带来非特异性信号。尤其是CD31、Iba1、GFAP这类本身背景就偏高的靶标,如果不做心脏灌流,几乎很难拿到干净可信的染色结果。

第三类是组织透明化实验,包括iDISCO、CLARITY、CUBIC等技术。全器官透明化的前提就是组织内部无血液残留,血红蛋白吸光能力强,会阻碍透明化进程,造成组织透明不均匀、成像出现暗影,破坏三维成像效果。

 第四类为活体成像后的取材验证。先完成活体荧光成像,例如荧光素酶报告基因模型,后续取瘤切片验证信号来源。如果不灌流,很难区分荧光信号是来自目的基因在肿瘤组织的表达,还是血管内残留血液带来的干扰,灌流之后的信号定位才具备可靠性。

第五类是原代细胞分离,例如肝细胞、心肌细胞提取。肝脏灌流本身就是原代肝细胞分离的标准两步灌流法流程,此时灌流不只是清洗血液,更是递送消化酶的关键通道,缺少灌流步骤,很难获得高活性的原代细胞。

三、这些实验场景无需心脏灌流

1. 只做Western Blot或者qPCR检测的样本,组织匀浆之后检测蛋白、核酸,少量血液混入在可接受范围,除非目的蛋白丰度极低并且存在交叉反应,否则不需要灌流。

2. 大部分流式细胞术实验也可以省略,单细胞悬液制备过程中,裂红液能够去除红细胞,替代灌流去除血液的作用。

3. 仅做组织冻存,暂时不开展切片实验的样本,也不必灌流;但如果后续计划改为切片实验,建议提前灌流并双份保存样本。灌流固定不会破坏冰冻切片形态,还能提升切片质量,唯一风险是过度固定会降低部分抗原的免疫原性。

四、心脏灌流的原理及操作步骤

心脏灌流是在动物体内构建单向循环通路,灌注液由左心室进入,顺着体循环流动,再从剪开的右心耳流出,将血管内血液冲出,在组织血供停止的瞬间完成组织固定,整套操作耗时仅5~10分钟。

操作流程:剪开右心耳、左心室穿刺、生理盐水灌注冲洗、4%多聚甲醛灌注固定。操作顺序千万不能颠倒,要先剪开右心耳,再进行左心室穿刺。右心耳剪开后,血液和灌注液才有流出通道,此时灌注才能形成单向循环;如果顺序颠倒,灌注液无法流出,血管内部压力升高,极易出现组织灌注不均,固定失败。
判断灌流是否充分,最通用的标志是肝脏由红变白;部分实验方案还会要求肾脏也变白,以此证明全身循环完成灌透,最终判定标准可以依照实验室既定方案调整。

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