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科研战神来了

新虫 (小有名气)

[交流] 病理技术知识!HE染色常见问题与优化对策(上)

1、切片出现水珠
原因:切片经过梯度乙醇处理后脱水不完全,残留水分无法被彻底除去,进入二甲苯透明、中性树胶封固步骤后,水分被封在盖玻片下方,形成肉眼可见的水珠,遮挡组织视野。
优化对策:取下盖玻片,用二甲苯充分溶解中性树胶封固剂;随后将切片放入无水乙醇重新充分脱水,再经过二甲苯透明,最后再次封固。同时要做好前置质控,脱水、透明所用试剂长期使用后含水量会上升,必须定期更换,从源头避免脱水失效。 2、细胞核呈现红色、棕褐色
原因:来自苏木精染液与返蓝流程的缺陷。一方面苏木精染色液放置太久发生过度氧化,染色活性下降;另一方面切片完成苏木精染色后,返蓝处理时间不足,无法完成显色转换。
优化对策:应提前核验苏木精染液的着色能力,氧化严重的染液及时更换。染色结束后预留充足返蓝时间,可采用流水、温水,或是稀氨水、0.2%碳酸氢钠弱碱性溶液完成返蓝,保障细胞核正常蓝染。 3、切片脱蜡后出现大片白色斑点
原因:大多是脱蜡工序不到位造成。第一种情况是烤片温度偏低,石蜡薄膜没有充分融化;第二种是切片浸泡二甲苯时间不足,或是二甲苯反复使用浓度下降,石蜡残留于组织表面形成白斑。
优化对策:若是烤片不足导致,需要去除原有封固胶,重新二甲苯脱蜡;若是二甲苯失效、浸泡时间不足,则更换新鲜二甲苯,延长脱蜡时长,再依次经过乙醇、盐酸褪色后重新整套HE染色。
4、细胞核苍白暗淡、苏木精染色整体偏淡
原因:苏木精染色时长太短、染液氧化失效、酸性分化时间过长;组织固定不及时;骨组织样本则大多因为脱钙过度。
优化对策:处理时优先进行重染色。如果样本经过酸性固定液处理,细胞核着色能力受损,需要适当延长苏木精染色时间,也可以更换Weigert铁苏木精染液。针对Zenker液、Bouin液固定的组织,可做前置中和处理,再开展染色,改善细胞核着色效果。 5、细胞核过染,苏木精染料弥散进入细胞质
原因:一般是苏木精染色时间过长、切片厚度偏大、分化时间不足、返蓝不充分。
优化对策:先排查切片厚度,若切片过厚则需要重新切片;切片厚度达标时,可对切片进行脱色漂白,重新染色,缩短苏木精浸染时长,适当拉长分化时间,把控整套染色节奏。 6、伊红着色偏淡,细胞质红色很浅
原因:主要包含伊红染液pH大于5,蓝化残留的弱碱性溶液中和染料,切片太薄,或是伊红染色后在低浓度乙醇脱水太久,颜色被洗脱。
优化对策:需要将伊红染液pH调节至4.6‑5.0;彻底洗净切片上残留的碱性蓝化液;把控切片厚度,缩短低浓度乙醇浸泡时间,防止伊红被过度洗脱。

7、细胞质过染、分色不足

原因:伊红染液浓度过高、染色时间过长,或是乙醇脱水分化时间不够。

优化对策:适度稀释伊红染液,缩短染色时长,规范乙醇脱水步骤的浸泡时间,同时复核切片厚度,保证细胞质染色深浅适中,与蓝紫色细胞核形成鲜明对比。
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