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[交流] Luminex多因子检测证实：USP22 抑制剂协同 GPC3 CAR-M 重塑巨噬细胞抗肿瘤炎症微环境

一、文献信息
本文为浙江大学团队联合中国医学科学院血液病医院于 2026 年接收、预发表于肿瘤领域权威期刊《Cancer Letters》的临床前转化研究论文。

英文标题：USP22 Inhibition Potentiates GPC3 Chimeric Antigen Receptor Macrophages Efficacy in Hepatocellular Carcinoma by Downregulating Tumor CD24 Expression

中文标题：抑制 USP22 通过下调肿瘤细胞 CD24 表达增强靶向 GPC3 嵌合抗原受体巨噬细胞（CAR-M）抗肝细胞癌效应

二、摘要整体研究思路与核心结果解读
晚期肝细胞癌（HCC）免疫治疗仍存在肿瘤微环境免疫抑制、CAR-T 实体瘤浸润受限等瓶颈，巨噬细胞天然具备肿瘤归巢与吞噬能力，是实体瘤细胞免疫治疗的理想载体；肿瘤表面 CD24 作为 “别吃我” 免疫检查点，通过结合巨噬细胞 Siglec-10 抑制吞噬杀伤，而去泛素化酶 USP22 可正向调控 CD24 表达。本研究构建靶向肝癌特异性抗原 GPC3 的 CAR-M 体系，分别基于 THP-1 单核细胞系、人原代单核巨噬细胞（hMDM）、人多能干细胞（hPSC）三种临床转化可行的巨噬细胞原料，体外验证 CAR-M 特异性识别、吞噬并裂解 GPC3 阳性肝癌细胞；联合 USP22 小分子抑制剂（USP22i）后，借助 Luminex 液态悬浮芯片、转录组、共免疫沉淀、体内腹膜播散瘤及患者来源异种移植（PDX）模型多层次证实：USP22i 一方面间接下调肿瘤细胞膜 CD24，削弱 CD24-Siglec-10 抑制性信号通路，解除肿瘤对巨噬细胞的吞噬逃逸；另一方面通过激活 NF-κB 通路驱动 CAR-M 向 M1 促炎型极化，大幅提升 TNF-α、IL-1β、IL-6 等抗肿瘤促炎因子分泌；体内动物实验证实二者联用可显著抑制肿瘤负荷、延长荷瘤小鼠生存期，且无明显脏器毒性，为肝癌提供兼具靶点特异性与免疫检查点解除双重作用的新型联合细胞免疫治疗策略。

三、分模块研究结果深度解析
（1）GPC3 靶向 CAR-M 细胞体系构建与单药体外抗肿瘤功能验证
研究完成三类不同来源 CAR-M 构建：永生化 THP-1 细胞系 CAR-M、人外周血单核原代 CAR-M-hMDM、干细胞来源通用型 CAR-M-hPSC；流式、荧光成像证实 CAR 膜表达效率均超 80%，可特异性结合 GPC3 阳性肝癌细胞。体外吞噬、荧光素酶细胞毒实验证明，CAR-M 可呈效应 / 靶细胞（E:T）依赖性杀伤 Huh-7、Hep3B、PLC、HepG2 等 GPC3 阳性肝细胞肿瘤细胞；转录组测序提示 CAR-M 共培养后显著富集 TNF、PI3K-Akt 免疫活化通路，M1 型极化标记基因上调、M2 抑制型基因下调。

基线细胞因子 ELISA 初筛可见 CAR-M 组 GM-CSF、IL-1β 升高、IL-10 降低，初步提示 CAR 结合肿瘤细胞即可诱导巨噬细胞促炎表型，但单一 CAR-M 杀伤活性仍受肿瘤 CD24 免疫检查点限制。

（2）USP22 抑制解除 CD24 介导的巨噬细胞吞噬逃逸（肿瘤细胞层面机制）
TCGA-LIHC 公共数据集分析证实 USP22 与 CD24 表达呈显著正相关；流式检测显示 USP22i 呈浓度梯度下调肝癌细胞膜 CD24 蛋白；共免疫沉淀实验证明 USP22i 处理后，Siglec-10 结合的 CD24 蛋白水平显著下降，阻断 CD24-Siglec-10 抑制信号，解除肿瘤细胞 “别吃我” 逃逸效应；细胞毒实验证实无论普通巨噬细胞还是 CAR-M，联合 USP22i 后肿瘤裂解效率均呈抑制剂浓度依赖性提升，该效应在全部肝癌细胞株中稳定复现。

（3）Luminex 多因子检测：USP22i 驱动 CAR-M NF-κB 依赖的 M1 促炎重塑（核心重点）
① Luminex 实验操作体系
分组包含空载体巨噬细胞（VEC-M）、CAR-M，分别设置 ±USP22 抑制剂处理，与 Hep3B 肝癌细胞共培养 48 h 后收集无细胞上清，同步定量检测TNF-α、IL-1β、IL-6、IFN-γ、IL-10五大核心炎症因子；依托 Luminex MAGPIX 液态悬浮芯片平台，基于荧光编码微球同步捕获多因子，经 5PL 标准曲线拟合计算各组细胞因子浓度，统计学分析组间分泌差异。

② Luminex 关键数据结果（对应图 4H、4I；图 7G/H/I）

1）THP-1 来源巨噬细胞 Luminex 结果（图 4H、4I）
单独 USP22i 处理普通 VEC-M：促炎因子 TNF-α、IL-1β、IL-6 分泌水平显著上升，免疫抑制因子 IL-10 分泌降低，说明单纯抑制 USP22 即可诱导巨噬细胞基础促炎活化；
CAR-M 单药组：相比 VEC-M 基础促炎因子分泌本底更高，印证 CAR 靶向识别肿瘤可激活巨噬细胞固有免疫；
CAR-M+USP22i 联合组：促炎因子分泌达到峰值，抑炎因子 IL-10 降至最低，二者存在显著协同促炎效应。

2）hPSC 干细胞来源 CAR-M Luminex 结果（图 7G、7H、7I）

无抑制剂干预下，CAR-hPSC-M 相比对照 VEC-hPSC-M，TNF-α、IL-1β、IL-6 稳定高表达，与 THP-1 体系结论完全一致，证明该极化表型不依赖永生化细胞系，临床可规模化制备的干细胞来源 CAR-M 具备同等免疫活化潜力。

③ 机制验证配套实验

采用 NF-κB 特异性抑制剂 BAY 11-7082 进行挽救实验，WB 检测显示 NF-κB 通路阻断后，USP22i 诱导的 pp65、iNOS（M1 标记）上调、CD206（M2 标记）下调效应被显著逆转，直接证明USP22i 调控巨噬细胞极化、提升促炎因子分泌的作用依赖 NF-κB 信号轴，Luminex 多因子分泌谱变化是该通路活化的功能性表型终点。

（4）体内动物模型验证联合方案抗肿瘤疗效
1）腹腔播散肝癌模型：THP-1 CAR-M 单药可适度延长荷瘤小鼠生存期，CAR-M+USP22i 联合组肿瘤荧光负荷几乎完全抑制，小鼠生存期显著优于所有单药对照组；

2）GPC3 阳性肝癌 PDX 临床异种移植模型：采用临床转化潜力更高的 hPSC-CAR-M 给药，联合口服 USP22i 可持续抑制皮下肿瘤生长，终点肿瘤体积、重量显著低于单药组，是更贴近临床样本的疗效佐证；

3）安全性评价：CAR-M 细胞体内无致瘤风险，小鼠心肝脾肺肾组织 H&E 染色、血清生化指标未见明显脏器损伤，联合方案具备良好体内耐受度。

（5）研究总体结论总结
本研究构建一套 “CAR 靶向识别 + USP22 双重调控” 协同策略：一方面靶向清除肝癌特异性 GPC3 抗原，另一方面同时干预肿瘤 CD24 免疫检查点、重塑巨噬细胞促炎微环境；Luminex 多因子定量检测作为关键功能学证据，直观证明 USP22 抑制剂可大幅放大 CAR-M 的抗肿瘤炎症分泌能力，为实体瘤 CAR-M 细胞治疗联合小分子去泛素化酶抑制剂提供完整体外机制、多细胞平台、多层次体内模型的临床前证据链。