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[交流] 实验动物知识!一文讲透小鼠眼眶采血操作要点、采血量控制与实操误区

眼眶采血是小鼠动物实验中十分经典的采血方式,凭借采血速度快、获取血量充足、操作熟练后成功率高等优势,被广泛应用于药理、毒理、代谢相关的科研试验当中。但这项操作对手法规范性要求较高,一旦操作不当,不仅容易造成小鼠眼部永久性损伤,还会污染血液样本,降低实验数据的可靠性,因此需要建立一套标准化的操作流程,规避实操中的各类问题。 一、小鼠眼眶采血的优缺点
相比于尾静脉采血等方式,眼眶采血拥有独特的适用优势,单次可采集0.2‑0.3mL血液,出流速度快,创口较小,动物恢复速度相对可观。但该方法也存在不可忽视的短板,采血过程中样本有可能混入少量组织液,因此并不适合对血液纯度有着极高标准的实验项目;多次反复采血还会对小鼠眼部造成不可逆伤害,该实验操作必须经过动物伦理委员会IACUC审批之后才可以开展。 二、小鼠眼眶采血步骤
完整的小鼠眼眶采血操作一共分为五步。第一步为麻醉处理,需要对小鼠进行充分麻醉,判断标准为轻捏小鼠脚趾没有回缩反应,保证全程处于无痛状态,保障动物福利。
第二步是小鼠保定,操作人员用手从背部握住小鼠颈部,轻轻施压让眼眶静脉丛充血,保持小鼠身体呈一条直线,切记不能用力压迫脖颈,阻碍小鼠呼吸,很多新手采血失败,根源都是保定手法把控不到位。
第三步进行穿刺,将毛细管和小鼠面部保持30‑45°夹角,从眼内眦顺着眼眶壁向着眼底旋转刺入2‑3毫米,感受到阻力时立刻停手。如果没有血液流出,可以轻微旋转毛细管或是小幅退出0.1‑0.5毫米再次尝试,严禁暴力、反复穿刺眼眶。

第四步收集血液,依靠重力让血液自然流入采血管,采集到实验所需血量之后,缓慢拔出毛细管。
第五步完成止血,使用无菌棉球轻压创口止血,持续观察1‑2分钟,确认不再出血后,再将小鼠放回饲养笼内。 三、采血量控制
小鼠全身循环血量大约在1.5‑2.5mL区间,单次采血总量不能超过循环血量的10%,大致为0.2mL,失血量一旦超过15%,小鼠极易发生休克死亡。如果实验需要多次重复采血,每周采血量不可超过循环血量的7.5%,每两周采血总量上限为10%。采血结束后,可以给小鼠补充温热的等渗液体,帮助机体快速恢复状态。
四、眼眶采血常见误区 1. 很多人认为保定力度越大越好,过度挤压脖颈很容易造成小鼠窒息,合适的力度以静脉充血、呼吸平稳为准。
2. 穿刺不出血就反复扎刺,会严重破坏眼部组织,微调位置依旧采血失败就要及时停止。
3  采集后的血液长时间留在毛细管中放置处理,血液会快速凝固,采血后要尽快转移至抗凝管。
4. 止血之后不观察状态直接放回鼠笼,很容易出现术后持续出血的意外情况。

总而言之,规范的眼眶采血操作可以总结为六大要点:麻醉到位、保定适度、角度准确、深度控制、血量合规、止血观察。严格遵守操作规范,既能保障实验样本质量,也能落实动物实验伦理要求,减少动物痛苦,保障动物后续存活状态,为后续一系列动物实验打下可靠基础。
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