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科研战神来了

新虫 (小有名气)

[交流] 反复重染还是高背景?蛋白质银染避坑指南,新手也能一次成功

第一部分:准备工作(决定成败的90%)别小看这一步,背景花了、出黑点,99%是前期没做到位。电泳液:必须新鲜配制!别偷懒用昨天的,微生物繁殖或离子浓度变了,跑出来的胶后续染色容易出纹理。电泳槽:拆开仔细刷洗,尤其是电极丝和胶板缝隙。用自来水冲掉残胶后,ddH₂O 反复淋洗 3 遍。器皿洁癖:我强烈推荐直接用新开封的 10 cm 一次性塑料培养皿做染色盒。玻璃器皿容易残留银离子或洗涤剂,是背景加深的元凶。水:全程电阻率 18.2 MΩ·cm 的超纯水,普通蒸馏水不行的哈!摇床:室温(20-25℃),转速固定在 60-70 rpm。太猛了胶容易碎,太慢了反应不均匀。

第二部分:试剂配制建议用 50 mL 离心管 来分装配制,方便操作。以下配方是按 100 mL 总体积 算的,实际根据胶的大小按比例增减。1. 固定液(经典配方)无水乙醇:50 mL冰乙酸:10 mLddH₂O:40 mL
顺序无所谓,混匀就行。2. 30% 乙醇洗涤液无水乙醇:30 mLddH₂O:70 mL3. 银染增敏液(重点!降低背景的神器)无水乙醇:30 mL冰乙酸:5 mL戊二醛(25%):100 μL(终浓度 0.025%)硫代硫酸钠(Na₂S₂O₃·5H₂O):20 mgddH₂O 补足至:100 mL⚠️ 临用前现配!戊二醛和硫代硫酸钠加进去后混匀,避光放置。4. 银溶液(核心显色剂)硝酸银(AgNO₃):0.2 gddH₂O 补足至:100 mL☠️ 避光操作!硝酸银见光分解,用锡纸把瓶子包起来。现配现用,配好就染。5. 显色液(条带出现的关键)无水乙醇:30 mL甲醛(37%):300 μL(一定要临加!)无水碳酸钠(Na₂CO₃):2.5 gddH₂O 补足至:100 mL注意顺序:先用水把碳酸钠摇溶了,再加乙醇和甲醛。6. 终止液冰乙酸:5 mLddH₂O:95 mL如果想长期保存干胶,可以再加 5 mL 甘油,防止胶变脆。

第三部分:详细操作流程(按部就班,稳赢)电泳结束,撬开玻璃板,把胶滑进培养皿里(注意正反面),开始以下操作:① 固定(时间越久背景越干净)溶液:固定液时间:室温摇动 至少 1 小时。专家私藏:我一般直接扔摇床上固定过夜(12-16小时)。别怕,胶不会坏,背景能洗得跟白纸一样干净!② 30% 乙醇洗涤(过渡清洗)溶液:30% 乙醇时间:摇动 10 分钟。作用:把固定液里的乙酸和残留SDS置换出来。③ 超纯水洗涤(继续降背景)溶液:ddH₂O时间:摇动 ≥ 10 分钟(15分钟更佳)。注意:这一步水洗充分了,后面的银染背景才会通透。④ 增敏(2分钟,短平快)溶液:银染增敏液时间:精准计时 2 分钟!关键:倒掉水后迅速倒入增敏液,到点立马倒掉。多一秒都可能让背景发灰。⑤ 增敏后水洗(两次,快速)溶液:ddH₂O第一次:摇动 1 分钟,弃液。第二次:摇动 1 分钟,弃液。目的是冲掉多余的戊二醛,但别冲太久,不然增敏效果就没了。⑥ 银染(10分钟,避光)溶液:银溶液时间:精准计时 10 分钟。操作:倒入后立马把培养皿用锡纸盖住,放在摇床上轻轻晃。到点立刻倒掉银液(记得回收废液)。⑦ 银染后水洗(生死时速1.5分钟!)溶液:ddH₂O时间:严格控制在 1 分钟到 1.5 分钟之间! 掐着秒表来!血泪教训:坚决不能超过 1.5 分钟!超过这个时间,结合在蛋白上的银离子就被洗脱下来了,后面怎么显色条带都淡淡的,别怪我没提醒你。⑧ 显色(盯紧了,别眨眼)溶液:显色液时间:3 - 10 分钟(动态观察)。操作:倒入显色液后,就在旁边守着看。一般 1-2 分钟开始出条带。当目的条带清晰可见,背景微微泛黄但还没变深时,立刻终止!千万别去洗个手再回来看,回来就全黑了。
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