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实验动物解剖与取材全攻略
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一、实验前准备? 取材用具准备 你需要准备以下工具：动物固定板、刀片、大中小号解剖镊子（包括无齿镊）、大中小号解剖剪、止血钳、滤纸、纱布、棉签、注射器、小蜡板、天平、尺子、铅笔、标签、固定容器和实验记录本等。 取材试剂准备 麻醉药：如三氯甲烷或乙醚等吸入麻醉药，以及注射用麻醉药。 生理盐水：用于清洗组织标本。 固定溶液：10%中性甲醛溶液、4%多聚甲醛、Bouin's液、Carnoy's液等特殊固定液。 废弃物存放准备 使用有明显标志的黄色垃圾袋存放动物废弃脏器和尸体，用锐器盒存放取材废弃针头、刀片、注射器等。 二、实验动物解剖取材及注意事项 解剖取材方法 动物处死或麻醉过程要迅速，避免长时间应激或濒死状态，影响实验结果。以大鼠、小鼠为例，麻醉后固定四肢，仰卧于解剖板上，用酒精或湿纱布浸湿胸腹部皮毛，用大解剖剪依次打开胸腹部，取出目标脏器。 肉眼观察并描述体表及脏器变化 在动物模型饲养期间，动态观察并记录体表及脏器变化。 脏器取出方法 取脏器组织要快速，取好后立即放入固定液中。尽量用无齿镊夹住脏器周围结缔组织，避免夹伤组织造成人为损伤。肝、肾等较大脏器可先切成薄块状组织，固定后再切片固定。垂体、肾上腺、甲状腺等小组织，应平贴于滤纸上再固定。脏器上的血液、黏液等污物，用生理盐水冲洗后再固定。消化系统空腔脏器按胃、十二指肠、空肠、回肠、结肠、直肠的顺序排列，沿肠系膜分开后平贴于滤纸上再固定。取材用的剪刀、刀片要锋利。取材时，对脏器病变部位的形状、色泽、位置、大小及切面等情况，做好实验记录。核对实验编号，取材结束仔细核对各实验组编号。 三、解剖取材注意事项?? 取脏器组织要快速，取好后立即放入固定液中。 尽可能不用有齿镊夹取，镊子不能直接夹住脏器组织，尽量用无齿镊夹住脏器周围结缔组织，避免夹伤组织造成人为损伤。 肝、肾等较大的脏器可先将其切成较薄的块状组织，固定或稍固定后再切成片状继续固定。 垂体、肾上腺、甲状腺等小组织，应平贴于滤纸上再固定。 脏器上附有血液、黏液等污物时，用生理盐水冲洗后再固定。 取材时，切取的部位、位置、组织块的排列要规范统一。 消化系统空腔脏器，按胃、十二指肠、空肠、回肠、结肠、直肠的顺序排列，沿肠系膜分开后平贴于滤纸上再固定。 取材用的剪刀、刀片要锋利。 取材时，对脏器病变部位的形状、色泽、位置、大小及切面等情况，做好实验记录。 核对实验编号，取材结束仔细核对各实验组编号。        发自小木虫IOS客户端 |
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