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[交流] 干货分享丨LLC细胞培养与基因编辑实用技巧全解析

LLC细胞来源于C57BL小鼠肺组织,是经典的高转移、高耐药肿瘤模型,广泛用于肿瘤转移及化疗机制研究。小源带你一站式解锁LLC细胞培养技巧与基因编辑实操关键点!

一、小鼠肺癌细胞(LLC)基本信息

细胞名称:小鼠肺癌细胞(LLC)

细胞形态:上皮样、圆形细胞混合

细胞培养条件:90%DMEM+10%FBS

气相:空气,95%;二氧化碳,5%

温度:37℃

换液频次:传代时换液

传代比例:1:2-1:3

细胞生长状态参考:

l 正常状态:细胞形态不均一,上皮样细胞与圆形细胞同时存在,比例不定,均以贴壁状态存在;可能存在少量悬浮细胞。(见下图)

l 异常状态: 细胞拉丝或拉长;细胞萎缩、变圆;细胞碎片增多。(见下图)


二、LLC细胞复苏流程

1.准备培养基

取7mL完全培养基于离心管中备用。

2.细胞解冻

将细胞从干冰里取出,用镊子夹住盖子放入 37℃水浴中快速晃动(注意:水不能没过盖子),使其在1分钟左右完全融化,直至冰块融化至绿豆大小,停止水浴。

3.细胞离心

将解冻后的细胞悬液转移至离心管中,1100rpm条件下离心4分钟,弃去上清液。

4.重悬与接种

用完全培养基重悬细胞,接种于合适大小的培养皿或培养瓶中。

5.细胞培养

将培养皿或培养瓶置于37℃培养箱中培养,24小时后观察细胞状态及贴壁情况。

三、LLC细胞传代步骤(以T25瓶为例)

1. 传代条件

l 当细胞汇合度达到80-90%时可进行传代。

l 传代时在超净台内弃去培养瓶里的培养液,加入5mLPBS洗涤细胞1-2次。

2.胰酶消化

l 加入1mL胰酶,轻轻晃动瓶子并使胰酶完全浸过细胞。

l 将培养瓶放入培养箱孵育 1-2分钟。

l 待在显微镜下观察到大部分细胞变圆变亮,轻轻晃动培养瓶两侧有大部分细胞脱落时,立即终止消化。

3.终止消化

l 加入2倍胰酶体积即2mL完全培养基终止消化。

l 然后转移至15mL离心管中。

4.细胞悬液离心

l 1100 rpm 室温离心 4 分钟。

l 离心结束,弃去上清,加入完全培养基重悬细胞。

5.传代培养

l 细胞按照1:2-1:3比例传代。

l 传代第二天观察细胞状态。

四、LLC细胞冻存步骤

1. 收集细胞

按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中。

2.离心

1100rpm条件下离心4分钟,去掉上清。

3.重悬与冻存

用细胞冻存液重悬细胞,按每1mL冻存液含1×10^6个细胞/mL分配到冻存管中,标注好名称、代数、日期等信息。

4.降温与储存

将冻存管置于程序降温盒中,-80℃冰箱中过夜后转入液氮罐内保存。

五、LLC细胞培养要点与注意事项

1.细胞状态控制:建议在细胞达到约80%融合度时进行传代,以维持良好生长状态。

2.培养基保存:培养基需避光存放于4°C,并在有效期内使用,确保稳定性。

3.培养环境稳定:保持培养箱温度、湿度及CO₂浓度正常,避免环境波动影响细胞状态。

4.操作温度管理:实验前需将培养基和胰酶预热至37℃,以减少温度变化带来的应激反应。

5.传代操作规范:操作过程中避免剧烈吹打,防止损伤细胞膜;若细胞贴壁分布不均,可轻轻摇动培养瓶使其均匀分布。

6.血清质量选择:LLC细胞对血清品质较为敏感,建议使用高质量胎牛血清培养,以保证细胞正常贴壁生长,避免状态异常。

【小提示】:培养过程中可能会出现少量悬浮细胞。若贴壁细胞为主,可直接弃去悬浮细胞;若悬浮细胞比例较高,可通过离心收集后重新接种至培养瓶中。

六、LLC细胞转染时注意事项

1.细胞状态要求

确保细胞状态良好,使用对数生长期即70-80%汇合度在的细胞。

细胞80%活率>,可通过台盼蓝进行检测。

使用低代次细胞。

注意细胞消化时间,避免过度消化,对细胞造成伤害。

实验过程中细胞要吹打成单细胞,避免细胞聚团。

2.转染试剂与预实验

转染试剂使用前需要充分混匀保证其均匀性。

建议进行药筛预实验找到最佳药筛浓度,以便于转染后进行药筛。

3.电转法

控制细胞量,电转后根据细胞量接种至合适的培养板里。

使用温和的胰酶,并用含血清的培养基彻底终止消化。

用PBS洗涤细胞1-2次,彻底去除残留血清,避免离子干扰电穿孔。

进行预实验对电转参数进行优化。

保证电转后细胞≥50%贴壁率。

控制实验时间,电转全程不宜过长。

4.慢病毒法

建议先进行预实验,以确定最合适的MOI条件。

感染前将细胞汇合度控制在30–40%,避免过度生长影响感染效率。

病毒感染前加入助染剂Polybrene,以提高感染效果。

感染24小时后及时更换培养基。

病毒液使用过程中应避免反复冻融,以防活性下降。

若感染效率较低,可考虑进行复感染(前提是细胞对病毒具有良好耐受性),或尝试采用离心感染方式提升效率。

七、LLC细胞铺单克隆实验注意事项

1.细胞状态要求

l 使用对数生长期的细胞进行铺克隆,铺克隆前细胞汇合度建议控制在60%-70%左右。

l 铺克隆时细胞活率≥80%。

2.试剂与预实验

l 提前预温所有试剂(包括培养基、PBS)。

l 建议使用温和消化试剂(如TrypLE Express)。

3.铺板策略

l 进行预实验找到合适的铺克隆梯度,避免单克隆占比太低。

l 细胞接种96孔板时需确保细胞分布均匀;外围96孔加入PBS防止蒸发。

l 在单克隆培养期间,需要避免频繁晃动,以减少单细胞克隆脱落或迁移的风险。

4.稀释方法

l 使用“极限稀释法”进行铺克隆。

l 稀释细胞计数后结果最好落在1*10^6-2*10^6之间。

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