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传代与冻存技术:避坑指南与效率提升⏱️
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1️⃣ 传代时机:那个神秘的80%融合度 "传代要在细胞达到80%融合度时进行"——这句话几乎出现在每本细胞培养教材中,但80%到底长啥样? 实际上,80%融合度意味着在显微镜下观察,细胞之间仍有一定空隙,但已经铺满了大部分培养皿底部。过高的融合度(>90%)会导致细胞接触抑制,代谢废物积累;而过低时传代(<60%)可能影响细胞活力。 省时小技巧:培养前期可以每天固定时间用手机拍下显微镜下的细胞照片,久而久之你就能形成"肌肉记忆",一眼看出融合度! 2️⃣ 传代比例:不同细胞有不同"脾气" 我曾经天真地以为所有细胞都能用1:3传代...结果我的HepG2细胞差点饿死 生长快的细胞(如HeLa、293T):可采用1:6~1:10的比例 生长中等的细胞(如A549):通常1:3~1:5 生长慢的细胞(如某些原代细胞):建议1:2甚至更低 踩坑警告:新接触一种细胞系时,一定要先了解它的生长特性!我曾经因为按照HeLa的传代比例处理原代肝细胞,结果三天后发现培养瓶里几乎看不到细胞...那可是辛辛苦苦分离的P3代细胞啊! 3️⃣ 消化时间:过犹不及的艺术 消化时间掌握不好是新手的噩梦!过度消化会损伤细胞膜蛋白,而消化不充分则会导致细胞团聚。 对于常用的0.25%胰蛋白酶: 贴壁性强的细胞(如HT-29):可能需要5-8分钟 一般贴壁细胞:2-5分钟通常足够 贴壁性弱的细胞:1-2分钟可能就够了 观察细胞变圆、漂浮是判断消化充分的关键指标,但切记不要等到全部细胞都完全漂浮再终止消化! 省时小技巧:预热胰蛋白酶到37℃可以显著提高消化效率,缩短作用时间~ 4️⃣ 细胞冻存:保住你的"细胞宝贝" 冻存看似简单,却是细胞培养中最需要精细操作的环节! 冻存液配制:经典配方是90%FBS+10%DMSO,但不同细胞可能有特异需求。DMSO浓度过高会毒害细胞,过低则保护效果不足。 降温速率控制:理想的冻存是1℃/min的降温速率。没有程序降温仪?不要紧!把装有细胞的冻存管放入装满棉花的泡沫盒中,再放入-80℃冰箱,也能获得接近理想的降温效果。 踩坑警告:冻存前一定要检查细胞状态!处于对数生长期、无污染、活力高的细胞才适合冻存。我曾经冻存了一批状态不佳的细胞,复苏后活力低下,实验数据完全不可靠... 5️⃣ 细胞复苏:起死回生的关键时刻 复苏是对细胞的二次伤害,需要格外小心: 迅速解冻:37℃水浴快速解冻至仅剩小冰核 立即稀释:用预温培养基逐滴稀释DMSO,减少渗透压冲击 密度适中:复苏初期细胞密度不宜过低,以增强细胞间相互支持 及时换液:接种4-6小时后更换培养基,去除残余DMSO 毕合生物(www.bihebio.com)提供服务内容:分子生物学、免疫, 重组蛋白及ELISA相关、活性小分子化合物、高端化学、材料化学、细胞资源库与培养相关、生命科学、天然产物 |
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