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导致蛋白质沉淀/聚集的关键因素已有2人参与
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物理因素:蛋白质的天敌 ️ 最常见的物理因素!温度绝对是头号杀手记得我上个月辛辛苦苦纯化的IL-2蛋白吗?放在实验室台面上忘记及时放回4℃冰箱,两小时后回来就看到溶液变得浑浊,简直想哭 高温会增加蛋白分子的动能,促使其暴露内部疏水基团,进而形成无规则聚集体。 还有一个反复伤害我的就是冻融循环上上周取样分析,一支珍贵的抗体反复从-80℃拿出来又放回去,到第三次时已经出现了明显的微粒。冻融过程中形成的冰晶会对蛋白质结构造成机械损伤,每冻一次,损伤就累积一分! 另外大家别忘了剪切力的影响!我曾经为了快速溶解一支浓缩蛋白,用力摇晃、甚至用漩涡混匀器高速震荡,结果产生大量泡沫,回头一看,蛋白活性只剩原来的30%了 这是因为剪切力和气-液界面会导致蛋白质展开变性。 最后是浓度过高的问题,有次为了提高产量,我将重组GPCRs蛋白浓缩到8mg/ml,结果第二天来一看,全变成了果冻状 高浓度时蛋白分子间相互作用的机会大大增加,特别是对于那些表面疏水区域多的蛋白! 化学因素:细微变化,巨大影响 pH值变化简直是蛋白质的噩梦!记得有一次我的缓冲液配错了,pH偏离了最佳值1.5个单位,我的激酶蛋白立刻就出现了絮状沉淀因为pH会改变蛋白表面电荷分布,影响其溶解度和构象稳定性。 离子强度波动也是个隐形杀手 曾经我按照文献将纯化好的蛋白透析到低盐缓冲液中,想着"低盐肯定好啊",结果第二天一看,全部沉底了!某些蛋白需要一定的盐浓度来屏蔽表面电荷,维持溶解状态。 错误的缓冲液组分也是灾难源头 去年我用Tris缓冲液保存一个含有大量赖氨酸残基的蛋白,两天后发现大量沉淀——原来Tris会与这些赖氨酸残基发生反应。后来改用PBS,问题立刻解决! 还有氧化还原环境变化 一个含有多个半胱氨酸的转录因子,我没有及时加入DTT,让它暴露在空气中过夜,第二天发现形成了大量二硫键交联的聚合物。 生物因素:蛋白自身的"性格"问题 有些蛋白天生就有"社交恐惧症",比如我研究的一种膜蛋白,无论怎么优化条件,离开了脂质环境就开始聚集 这完全是由于其高度疏水的跨膜区域决定的。 翻译后修饰缺失也是常见原因。有次我们在大肠杆菌中表达一个需要糖基化的人源蛋白,纯化后总是形成包涵体,后来才发现没有正确的糖基化修饰,蛋白就无法保持正确折叠。 最可怕的是蛋白酶污染!上个季度我有一支蛋白样品被微量蛋白酶污染,过夜后不但沉淀,还失去了全部活性 那些被部分降解的片段往往会暴露出原本隐藏的疏水区域,引发大规模聚集。 操作因素:人为失误最心痛 纯化过程中的错误操作简直是家常便饭...记得我有次急着下班,忘记调整洗脱缓冲液的pH,结果第二天的样品全部混浊。另一次是我急于得到结果,将蛋白从凝胶过滤柱上快速洗脱,结果造成局部高剪切力,导致蛋白大量失活沉淀。 储存条件不当也是大忌!我最心痛的一次是将价值不菲的抗体放在实验室窗台边,被阳光直射了整个下午,回来时已经变成了一堆"豆腐渣" 紫外线导致蛋白质内部氨基酸残基光氧化,破坏了整体结构。 毕合生物(www.bihebio.com)提供服务内容:分子生物学、免疫, 重组蛋白及ELISA相关、活性小分子化合物、高端化学、材料化学、细胞资源库与培养相关、生命科学、天然产物 |
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