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科研战神来了

新虫 (小有名气)

[交流] 今日科普:电泳marker为什么跑不开

基本原理核酸电泳是进行核酸研究的重要手段,是分离、鉴定和纯化核酸的主要方法。核酸电泳一般有琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳。琼脂糖凝胶电泳是以琼脂糖作为支持介质的一种电泳方法,常用于DNA切胶回收,DNA分离和用于佐证DNA是否重组、质粒是否切开等等,因其分离范围较广,在实验室中应用广泛。
而marker跑不开的问题,几乎每个科研人都踩过坑。这不仅会直接拖延实验进度,更可能因为无法准确参照分子量,导致后续结果判断失误。接下来,我们就从关键影响因素入手,拆解对应的解决思路

关键影响因素一:琼脂糖浓度

因素:琼脂糖浓度是调控凝胶孔径大小的核心,浓度越高,凝胶内部孔径越小。对于大分子marker片段(尤其是高分子量markers),过小的孔径会形成明显阻碍,导致其迁移速度大幅放缓,最终出现整体跑不动或片段分离效果极差的情况。
解决:需紧扣分子量与浓度的匹配性:小分子量marker(如100-2000 bp)适配1.5%-2%的琼脂糖浓度;中高分子量marker(如1000-10000 bp)建议用0.8%-1.2%;若涉及超大分子量(如>10000 bp)的marker,浓度可降至0.5%-0.7%,但要注意此时凝胶强度下降,操作时需小心避免断裂。

关键影响因素二:电泳缓冲液

因素:电泳缓冲液的状态直接影响电泳环境稳定性,是marker正常迁移的重要保障。实际实验中,缓冲液反复使用是常见问题,多次使用后,离子浓度会逐渐降低,pH值失衡,直接导致导电性下降,减慢marker迁移速度。此外,缓冲液配制错误也时有发生,比如误将5×或10×母液直接使用,而非稀释成1×工作液,浓度不当同样会干扰迁移。
解决:一是保证缓冲液新鲜,建议现配现用,避免多次重复的使用,TAE或TBE可根据实验习惯选择;二是严格按配方配制,以1×TAE为例,需确保浓度为40mM Tris-乙酸、1mM EDTA,避免浓度偏差引发问题。

关键影响因素三:电压与电泳时间

因素:电压和电泳时间是影响marker迁移效率的两个关键因素,二者配合不当极易导致跑不开。一方面,电压设置过低会使marker迁移速度极慢,即使电泳一段时间,也难看到片段分离;另一方面,即便电压参数合适,若时间不足,marker片段也无法充分散开,呈现聚集状态。
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