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[交流] 建议收藏!各类组织取材注意事项全攻略

在动物实验中,组织取材是实验成功的关键第一步。不同组织的结构和特性各异,取材操作稍有不慎就可能影响后续实验结果。今天,我们就为大家详细梳理脑、心脏、肝脏、脾脏、肺脏、肾脏、肠道、生殖器官、骨组织、皮肤、肌肉、脊髓等各类组织的取材注意事项,助力你的实验顺利开展! 一、脑组织处死小鼠后需尽快打开颅骨,操作时要小心,避免损伤脑组织。用小镊子和剪刀轻轻分离脑组织与颅骨,分离脑干、左右大脑半球时,切勿过度牵拉或挤压。
取材后立即放入预冷的固定液(如4%多聚甲醛)中,固定液用量为脑组织体积的10 - 20倍,以确保固定效果。 1、大脑:大鼠和小鼠整体取材,用纱布包裹固定;犬等较大动物在两大脑中央前后区、海马及基底结等处各取1块,大小为1.5cm×1.5cm×0.5cm。
2、小脑:经大脑横裂分离后取出,小动物整体取材并用纱布包裹固定;大动物取1块1.5cm×1.5cm×0.5cm的组织,需包括小脑中间部。 二、心脏组织胸腔剖开后直接切下心脏,操作时避免挤压心肌,防止组织损伤。打开胸腔时,注意保护心脏表面的血管和心包膜。
用镊子轻轻夹住心尖完整取出心脏,若需单独取材心房或心室,需准确切割,避免破坏心肌结构。
后续分析若为病理学检查,可采用合适固定液固定;若为分子生物学实验(如RNA提取),则迅速放入RNA保存液或液氮中冷冻保存。 三、肝脏组织暴露肝脏时,不要撕裂肝叶间的连接组织,用剪刀沿肝叶边缘准确剪下肝组织块,避免取到胆囊等周围组织。
肝脏富含酶类,取材后应尽快处理,固定液需及时渗透到组织内部,防止自溶。
在最大的肝叶各取1块包含包膜的组织,取材大小:小动物为1.0cm×1.0cm×0.5cm,大动物3.0cm×2.0cm×0.5cm;肝脏取材厚度不应超0.5cm,免疫组化用途取材为1.0cm×1.0cm×0.2cm。如有可视病灶,需包含病灶和临近正常组织,可先切取大块固定数小时至过夜,再修组织并换固定液继续固定;有胆囊的动物应取胆囊壁组织。
四、脾脏组织找到脾脏后,轻轻提起,用剪刀剪断周围系膜组织,完整取出脾脏。由于脾脏质地较脆,操作时要轻柔,避免挤压造成内部组织结构破坏。取材后可根据实验需求进行固定或冷冻保存。 五、肺脏组织打开胸腔后,小心分离肺脏与心脏、纵隔等周围组织。可取出整个肺脏,若只需部分肺叶,需准确切割,保持肺组织完整性,避免肺泡破裂。
肺组织含大量气体,放入固定液或保存液时,要确保其完全浸没,以保证固定或保存效果。
取两肺下叶和肺尖部组织各一块(包括胸膜),大小为1.5cm×1.5cm×0.5cm;若有病变,可根据病变大小与多少加取组织块。 六、肾脏组织打开腹腔后,小心分离肾周脂肪和结缔组织,避免损伤肾脏包膜。用镊子轻轻提起肾脏,剪断输尿管等连接组织,完整取出肾脏。若需区分皮质和髓质取材,需准确切割,取材后尽快处理。
左右肾脏各取1块,组织需包括皮质、髓质、肾乳头及被膜等各层结构,大小为1.5cm×1.5cm×0.5cm;膀胱取1块包含全层结构的组织,大小为1.5cm×1.5cm;若有可视病变,加取病变及周围组织。 七、肠道组织确定取材部位(如十二指肠、空肠、回肠或结肠)后,小心分离肠道与周围肠系膜组织。切断肠道时,切口要整齐,避免内容物泄漏污染组织;若需分析肠道内容物,要先收集内容物再取材。
肠道组织较薄且易变形,取材后应妥善固定或保存;研究肠道黏膜等特殊结构时,取材要尽量保持黏膜完整性。
分别在十二指肠逆行部和反迥部各取1块全层结构组织;小肠分别在空肠及回肠末端各取1块全层结构组织;大肠分别在结肠和直肠各取1块全层结构组织;所取材料尽量保持肉眼标本完整性,一般取长度为1~2cm。 八、生殖器官(睾丸、卵巢、子宫等)1、睾丸:分离阴囊皮肤后小心取出,避免损伤被膜和曲细精管结构。
2、卵巢:准确找到位置,小心分离周围脂肪和输卵管组织,完整取出。
生殖器官体积较小,可整体取材固定后,再分别取睾丸、附睾、前列腺(大动物)左外侧缘及中间部各一块。

3、子宫:子宫是中空脏器,宫颈易发病变,需取全层。子宫、宫颈(全层)及卵巢各取1块组织,大小为1.5cm×1.5cm×0.2cm。 九、骨组织可从四肢或脊柱处获取骨组织,使用专用钳子和锯进行取材,操作时佩戴手套以防感染。取材后应去除附着的肌肉和软组织,可直接冷冻保存或固定在乙醇等固定液中以备后续实验。 十、皮肤和皮下组织小鼠背部皮肤可作为取材区域,用剪刀或手术刀切下特定面积的皮肤。操作时保证器械无菌,避免皮肤外部微生物污染,皮下组织尽量与皮肤分开保存。
皮肤组织用于组织学观察和免疫组化时,建议立即放入固定液;若需RNA提取,直接冷冻保存。 十一、肌肉组织一般取四肢肌肉、腹部肌肉等,取材前用生理盐水冲洗表面,减少血液残留。操作时注意无菌,避免牵拉和挤压,确保组织完整。可根据需要选择立即冷冻保存或放入适当的固定液中。 十二、脊髓自颅底至底椎沿背部中线切开皮肤,剥离棘突与椎板上的骨膜、软组织等,在靠近棘突两旁向下用锯垂直锯开,动作小心,勿损伤脊髓;下端在荐椎和尾椎交界处横行锯开,用钳从上向下掀起已分离的棘突和椎板,暴露出硬脊膜,沿硬脊膜外切断各神经根,用镊子夹住硬脊膜向外轻拉,将硬脊膜和脊髓一起取出,然后沿脊髓前后正中线剪开硬脊膜,注入固定液。分别于颈、胸、腰髓阶段各取一段长0.5cm的组织。 以上就是各类组织取材的关键注意事项啦!实验操作中,大家务必根据组织特性和实验目的,严格遵循这些细节,才能为后续实验打下坚实基础。
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