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科研战神来了新虫 (初入文坛)
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WB 实验避坑：那些年我们闯过的祸、犯过的错!
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一、Western Blot实验基本原理1、蛋白质分离利用聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）技术对蛋白质样品进行分离，使不同分子量的蛋白质在凝胶中按大小排列。该技术基于蛋白质分子在电场中的迁移率差异，实现蛋白质的分离。2、蛋白质转移通过合适的转移方法（如电转移），将分离后的蛋白质从凝胶转移到固相载体（如硝酸纤维素膜（NC 膜）或聚偏氟乙烯膜（PVDF 膜））上。固相载体凭借其独特的物理化学性质，以非共价键形式吸附蛋白质，且能最大程度维持电泳分离后多肽的原有形态以及生物学活性。3、免疫反应将固相载体上的蛋白质作为抗原，与特异性的抗体发生免疫反应。首先加入一抗，它能够精准地识别并结合到目标蛋白上。之后再加入标记有酶或放射性同位素的二抗，二抗与一抗特异性结合。最后，通过底物显色或放射自显影技术，使反应位点产生可见的信号，从而检测出电泳分离后的特异性目的蛋白，实现对特定基因表达蛋白成分的分析。二、新手实验心得 作为一名新手小白，我也独立跑了几次 Western Blot 实验，在这个过程中，大大小小的错误都犯了不少。以下是我遇到的一些问题和经验教训，希望能和大家分享，也欢迎大家补充更多可能走的“冤枉路”。1、配胶问题：下层胶加少了，上层胶不够，插梳子有气泡。解决方案：确保下层胶的量足够，完全覆盖凝胶板底部。在加入上层胶时，注意量的控制，避免不足。插梳子时要缓慢且平稳，避免气泡产生。问题：加完上层胶忘记插梳子。解决方案：在操作过程中，严格按照步骤进行，养成良好的实验习惯，避免遗漏关键步骤。问题：没有泡在电泳液就直接拔梳子，导致凝胶结构破坏。解决方案：在拔梳子前，确保凝胶完全浸没在电泳液中，这样可以防止凝胶结构被破坏，保证后续电泳的顺利进行。 2、上样问题：枪头侧壁蹭了太多液体，导致样品侧壁飘到隔壁孔。解决方案：在上样时，确保枪头垂直插入孔中，避免液体在侧壁积聚。上样动作要轻柔且准确，避免液体溅出。问题：loading buffer加少了，上样很飘。解决方案：确保每个样品中加入足够的loading buffer，通常比例为1:1，这样可以增加样品的密度，使其在电泳过程中更好地沉降。 3、电泳问题：Marker没到底，蛋白还没分开就结束了。解决方案：在电泳开始前，确保Marker完全进入凝胶孔中。根据蛋白质的分子量和电泳条件，合理设置电泳时间和电压，确保蛋白质能够充分分离。 4、转膜问题：配多块胶又一样的时候，有点混淆先后顺序。解决方案：在实验过程中，做好标记和记录，明确每块胶的顺序和对应关系，避免混淆。问题：胶没有泡在电转液里操作，转膜时裂了。解决方案：在转膜前，确保凝胶完全浸没在电转液中，避免凝胶干燥或因操作不当而破裂。问题：夹海绵太厚太紧，膜和胶中空了，中间条带糊了。解决方案：在转膜过程中，确保海绵的厚度和紧实度适中，避免因海绵过厚或过紧导致膜和胶之间产生空隙，影响转膜效果。问题：快速电泳液，400mA转50min，时间太长转过了。解决方案：根据电泳液的类型和转膜条件，合理设置转膜时间和电流强度。对于快速电泳液，建议先进行小规模实验，确定最佳转膜条件。5、封闭问题：快速封闭液过期，封闭不完全，条带黑不溜秋。解决方案：使用新鲜的封闭液，并严格按照说明书进行操作。如果封闭液过期，及时更换新的封闭液，确保封闭效果。 6、裁膜问题：孵多抗体分子量太接近，裁膜极限操作。解决方案：在孵育多个抗体时，尽量选择分子量差异较大的抗体，避免裁膜时的极限操作。如果分子量接近，建议在实验设计阶段进行优化。问题：裁膜没有留上下两个marker。解决方案：在裁膜时，务必保留上下两个marker，以便后续分析时能够准确判断蛋白的分子量。问题：蛋白没有压直，裁膜刚好裁到内参。解决方案：在转膜后，确保蛋白条带平整且位置正确，避免在裁膜时误裁到内参蛋白。7、曝光显影问题：蛋白量大，底物消耗完条带变白。解决方案：在显影前，根据蛋白的含量调整底物的用量，避免底物过早消耗。如果蛋白量较大，可以适当增加底物的量。问题：显影液不均匀覆盖全膜。解决方案：在显影过程中，确保显影液均匀覆盖整个膜，避免局部显影不完全。可以适当摇晃膜，使显影液均匀分布。问题：个别抗体杂带多，目标蛋白不显影。解决方案：选择特异性高的抗体，并优化孵育条件，减少杂带的产生。如果杂带较多，可以考虑更换抗体或调整实验条件。 |
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