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WB实验翻车现场?一文搞定常见问题+急救指南!已有1人参与
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一、条带失踪案:无信号/条带模糊 可能原因: 样本问题:蛋白含量不足、降解或提取不当。 ✅ 急救:BCA定量确认浓度;添加蛋白酶抑制剂;优化裂解液配方。 抗体失效:一抗/二抗浓度低、保存不当或反复冻融。 ✅ 急救:提高抗体浓度(建议梯度测试);更换新批次抗体;避免反复冻融(分装保存!)。 转膜失败:膜选择错误、转膜时间不足或气泡残留。 ✅ 急救:大分子蛋白用0.45μm PVDF膜;延长转膜时间;滚轮赶尽气泡! 💡 小贴士:内参也失踪?先检查样本是否全部降解,或直接更换内参抗体(比如β-actin换成GAPDH)! 二、背景噪音大:膜上“繁星点点” 可能原因: 封闭不充分:封闭时间短、封闭剂浓度低或类型不匹配。 ✅ 急救:延长封闭至1-2小时;提高脱脂奶粉/BSA浓度至5%;尝试不同封闭剂(如酪蛋白)。 抗体非特异性结合:一抗交叉反应或二抗浓度过高。 ✅ 急救:降低一抗浓度;增加洗涤次数(TBST洗3×10分钟);更换高特异性抗体。 膜污染:手套接触膜或试剂杂质残留。 ✅ 急救:全程戴手套,镊子夹取膜边缘;过滤缓冲液! ⚠ 注意:若背景呈“斑块状”,可能是转膜时气泡未排尽,务必用玻璃棒滚压! 三、条带“变形记”:位置异常/拖尾 可能原因: 胶跑歪了:电泳电压过高、缓冲液离子浓度异常。 ✅ 急救:降低电压(推荐80-100V跑浓缩胶,120V分离胶);更换新鲜电泳缓冲液。 分子量偏差:蛋白修饰(磷酸化/糖基化)或二聚体形成。 ✅ 急救:使用预染Marker对照;添加还原剂(如β-巯基乙醇);尝试梯度胶优化分离。 “微笑”条带:胶凝固不均或电泳发热严重。 ✅ 急救:确保灌胶均匀;电泳槽置于冰水中降温。 四、信号过曝:条带黑成一片 可能原因: 曝光时间过长:ECL试剂反应过度。 ✅ 急救:缩短曝光时间(从10秒开始试);稀释ECL工作液。 抗体浓度过高:一抗/二抗过量结合。 ✅ 急救:降低抗体浓度;减少孵育时间(参考说明书减半测试)。 🔍 进阶操作:若目标条带与杂带分子量接近,可尝试调整凝胶浓度(如8%→10%)提高分辨率! 五、“神秘条带”:非目标蛋白现身 可能原因: 一抗特异性差:识别相似表位或存在多克隆交叉反应。 ✅ 急救:更换单克隆抗体;查阅文献选择已验证抗体。 二抗非特异性结合:未完全去除的一抗残留引起。 ✅ 急救:增加二抗孵育后的洗涤次数(推荐5×5分钟)。 🌟 终极方案:敲除/敲低细胞验证是否为非特异性条带! |
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