| 查看: 697 | 回复: 1 | ||
| 【悬赏金币】回答本帖问题，作者超越呀呀将赠送您 5 个金币 | ||
[求助]
WB
|
||
|
为什么跑出来的条带全黑，有的上面有白色的条带 发自小木虫IOS客户端 |
回复此楼» 猜你喜欢
Western blot 问题求助
已经有0人回复
-
关于论文出版选项的求助
已经有4人回复
-
循环系统论文润色/翻译怎么收费?
已经有196人回复
-
关于Springer杂志社下International orthopaedics的疑问。
已经有10人回复
-
【求助】rBMSC细胞培养的过程中有可疑造血干细胞长起，该如何去除？
已经有3人回复
-
推荐调剂院校
已经有0人回复
-
澳大利亚昆士兰大学招收生物材料和细胞外囊泡方向CSC联合培养博士生
已经有7人回复
-
青岛理工大学环境与市政工程学院 招收调剂研究生
已经有0人回复
-
211本硕求博自荐信
已经有10人回复
|
一、条带失踪案：无信号/条带模糊 可能原因： 样本问题：蛋白含量不足、降解或提取不当。 ✅ 急救：BCA定量确认浓度；添加蛋白酶抑制剂；优化裂解液配方。 抗体失效：一抗/二抗浓度低、保存不当或反复冻融。 ✅ 急救：提高抗体浓度（建议梯度测试）；更换新批次抗体；避免反复冻融（分装保存！）。 转膜失败：膜选择错误、转膜时间不足或气泡残留。 ✅ 急救：大分子蛋白用0.45μm PVDF膜；延长转膜时间；滚轮赶尽气泡！ 💡 小贴士：内参也失踪？先检查样本是否全部降解，或直接更换内参抗体（比如β-actin换成GAPDH）！ 二、背景噪音大：膜上“繁星点点” 可能原因： 封闭不充分：封闭时间短、封闭剂浓度低或类型不匹配。 ✅ 急救：延长封闭至1-2小时；提高脱脂奶粉/BSA浓度至5%；尝试不同封闭剂（如酪蛋白）。 抗体非特异性结合：一抗交叉反应或二抗浓度过高。 ✅ 急救：降低一抗浓度；增加洗涤次数（TBST洗3×10分钟）；更换高特异性抗体。 膜污染：手套接触膜或试剂杂质残留。 ✅ 急救：全程戴手套，镊子夹取膜边缘；过滤缓冲液！ ⚠ 注意：若背景呈“斑块状”，可能是转膜时气泡未排尽，务必用玻璃棒滚压！ 三、条带“变形记”：位置异常/拖尾 可能原因： 胶跑歪了：电泳电压过高、缓冲液离子浓度异常。 ✅ 急救：降低电压（推荐80-100V跑浓缩胶，120V分离胶）；更换新鲜电泳缓冲液。 分子量偏差：蛋白修饰（磷酸化/糖基化）或二聚体形成。 ✅ 急救：使用预染Marker对照；添加还原剂（如β-巯基乙醇）；尝试梯度胶优化分离。 “微笑”条带：胶凝固不均或电泳发热严重。 ✅ 急救：确保灌胶均匀；电泳槽置于冰水中降温。 四、信号过曝：条带黑成一片 可能原因： 曝光时间过长：ECL试剂反应过度。 ✅ 急救：缩短曝光时间（从10秒开始试）；稀释ECL工作液。 抗体浓度过高：一抗/二抗过量结合。 ✅ 急救：降低抗体浓度；减少孵育时间（参考说明书减半测试）。 🔍 进阶操作：若目标条带与杂带分子量接近，可尝试调整凝胶浓度（如8%→10%）提高分辨率！ 五、“神秘条带”：非目标蛋白现身 可能原因： 一抗特异性差：识别相似表位或存在多克隆交叉反应。 ✅ 急救：更换单克隆抗体；查阅文献选择已验证抗体。 二抗非特异性结合：未完全去除的一抗残留引起。 ✅ 急救：增加二抗孵育后的洗涤次数（推荐5×5分钟）。 🌟 终极方案：敲除/敲低细胞验证是否为非特异性条带！ |
2楼2025-07-14 14:36:47