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手把手教你做“蛋白纯化”已有2人参与
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步骤: 1、构建原核表达质粒:目的基因PCR,载体酶切,连接,转化,挑单克隆送测序; 2、将构建成功的质粒转化到BL21(DE3)中,37℃培养过夜,挑单克隆小摇过夜; 3、小诱导摸索最佳诱导条件:将摇过夜的菌液1:1000接种到3mL LB中,37℃摇4-5h至菌液OD600=0.6-0.8,加入不同浓度IPTG(0.1-1mM),不同温度下诱导,随着温度降低,诱导时间延长,如37 ℃ 诱导4-5h,30°C诱导6h-8h,16°C诱导16-20h,取不同诱导条件下诱导前和诱导后的菌液,跑胶,考染,观察诱导结果;(一般来说,IPTG浓度越低,诱导温度越低,目的蛋白表达越慢,越利于蛋白质的正确折叠从而增加其可溶性,减少包涵体的产生); 4、找到最适诱导条件后,将菌液1:1000接种到2L的LB中,37℃摇至菌液OD600=0.6-0.8,吸出20μL菌液留待跑胶(1),然后在预实验得到的合适的诱导条件下诱导蛋白表达,吸出20μL菌液留待跑胶(2); 5、取出诱导后的菌液,4000g,4℃离心15min; 6、弃上清液,称重,每克菌加入10mL Lysis buffer(1:100加蛋白酶抑制剂),重悬,冰上放置约30min; 7、压力破碎:放掉高压均质仪中的酒精,用水冲两遍,用Lysis buffer平衡一遍,加入菌液,加压(压力不要超过800kpa),菌液过三到五遍至透明不粘稠; 8、收集破碎后的菌液,12000g,4℃离心20min,将上清和沉淀分离,各留取20μL样品(3)(4)待跑胶; 9、将2mL Ni-NTA加入纯化柱,待乙醇滤过,用水冲洗,加入Lysis buffer平衡柱子; 10、用Lysis buffer将Ni-NTA重悬加入上清中,混匀,4℃摇床孵育2h; 11、将上清液4℃过柱,收集滤过液20μL(5); 12、用5mL Wash buffer洗柱子3次,收集滤过液样品20μL(6); 13、加入1mL Elution buffer,孵育5min,收集洗脱液,重复5次,收集5mL洗脱液于同一管中,留取20μL样品(7); 14、将实验过程中得到的各个蛋白样品跑胶,考马斯亮蓝染色1h,脱色至背景蓝色较浅,可见清晰蛋白条带; 15、分析各个样品的蛋白条带情况,根据结果进行后续操作:若洗脱蛋白样品中蛋白无杂带或杂带少且浅,可进行透析与浓缩,若杂带多则需要再次纯化后进行透析与浓缩。 16、透析:将样品加入透析膜中,两端夹紧,4℃透析过夜; 17、浓缩:根据样品分子量大小选择合适的浓缩管4℃低速浓缩,浓缩后测蛋白浓度,分装标记,在液氮中速冻,然后冻存于-80℃冰箱。 |
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