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铁虫 (初入文坛)

[交流] 芋螺肽的分支GⅢA简单合成介绍

1.1 GⅢ A-1 的化学结构及合成路线

GⅢA-1 的氨基酸序列为 Arg-Asp-Ala-Cys-Thr-Hyp-Hyp-Lys-Lys- Cys- Lys-Asp-Arg -Gln-Ala-Lys-Hyp-Gln-Arg-Cys-Cys-Ala*(*表示 C-端酰胺化) , 含有两个链内二硫键 Cys 4 -Cys 20 , Cys 10 -Cys 21 ) 。 其合成路线如图1

1.2 GⅢA-1 树脂肽的合成(固相合成)

(1) 树脂肽的合成

采用 Fmoc 保护策略固相合成 GⅢA-1 树脂肽。 反应在 CEM Liberty 微波辅助全自动多肽合成仪上进行, 反应条件为微波功率 35W, 反应温度 75℃。 树脂采用取代度为 0.74 mmol/g 的聚苯乙烯基 Rink Amide AM 树脂, 以 20%哌啶/DMF 溶液作为脱保护剂, 肽键形成采用 HBTU 偶联, 反应物按树脂载量 5 倍摩尔数投料。合 成 过 程 中 各 侧 链 保 护 的 氨 基 酸 分 别 选 用 Fmoc-Arg(Pbf)-OH ,Fmoc-Asp(OBu t )-OH, Fmoc-Cys(Acm)-OH, Fmoc-Ala-OH, Fmoc-Cys(Trt)-OH,Fmoc-Thr(Bu t )-OH, Fmoc-D-Pro-OH, Fmoc-Lys(Boc)-OH, Fmoc-Gln(Trt)-OH, „„。多肽链构建完成后, 脱除 N-端氨基酸的 Fmoc 保护基。

(2) 树脂多肽的获得

树脂肽收缩, 从多肽合成仪上取下, 加入 DCM 使之悬浮, 用真空泵抽滤, 加入DCM 洗涤 4-5 次, 再用真空泵抽干, 称重。

1.3 GⅢA-1-a 的合成(合成和纯化线肽)

(1) 裂解

将 1.31 g 树脂肽置于圆口烧瓶中, 搅拌下缓缓加入 30 mL 裂解液(TFA: Tis:水=95: 2.5: 2.5, V/V, 每克肽树脂需加裂解液 12-15 mL) 进行裂解, 室温下电磁搅拌反应 1.5 h;

(2) 粗肽的获得

裂解液过滤, 滤液减压除去 TFA, 用冷的无水乙醚沉淀出粗肽。 将粗肽转入离心管中, 离心, 弃去上清液, 沉淀物用冷的无水乙醚洗涤 3 次(重复离心过程) ,将所得粗肽在离心管中晾干, 称重;

(3) 粗肽的分析

取 0.20 mg粗肽溶于 0.1% TFA/水, 溶解后离心, 取上清液约 50 μ L进样 HPLC分析, 流动相为 A, B 二元梯度, A 为 0.1% TFA/水, B 为 0.1% TFA/乙腈, 60.0 min内 B 从 0%变为 60%, 流速 1 mL/min, 检测波长为 214 nm;

(4) 质谱鉴定

收集 HPLC 主要产物, 用 MALDI-TOF-MS 分析。

(5) 线肽的纯化

取粗肽 120 mg 溶于约 15 mL 0.1% TFA/水, 0.22μ m 针头过滤器过滤, 滤液进样过 HPLC 半制备柱, 每次进样量约 8 mg(进样量逐步放大) , 流速为 3 mL/min的, 然后梯度洗脱, 流动相为 A, B 二元梯度, A 为 0.1% TFA/水, B 为 0.1% TFA/乙腈, 40.0 min 内 B 从 0%变为 40%, 检测波长为 214、 254 和 280 nm;

(6) 线肽的冷冻干燥

收集 HPLC 目标组分, 收集液用旋转蒸发仪减压除去乙腈, 冷冻干燥过夜,称重, 取少量溶于 0.1% TFA/水(浓度 1 mg/mL) 用 HPLC 分析纯度, 其余放置于 4℃冰箱保存备用。 得到线肽 40 mg, 产率 33.3%。

1.4 GⅢA-1-b 的合成(空气氧化)

(1) 线肽的氧化

称取 30 mg GⅢA-1-a, 以 0.2 mg/mL 的浓度溶入 150 mL 0.2 M 碳酸氢铵水溶液, 电磁搅拌, 室温条件下反应;

(2) 氧化监测

每 24 h 取约 50 μ L 氧化液进行 HPLC 分析, 通过观察出峰时间、 峰形变化判断氧化反应是否完全, 同时辅以 MALDI-TOF-MS 检测;

(3) HPLC 制备

转化完成后, 氧化液用 0.22 μ m 针头过滤器过滤, 以 5 mL/min 的流速通过C18 制备柱, 然后梯度洗脱, 洗脱梯度为 55.0 min 内 B 从 0%变为 55%, 检测波长为 214、 254 和 280 nm, 用自动收集器收集;

(4) 单环肽 GⅢA-1-b 的获得

MALDI-TOF-MS 分析确定目标组分所在管, 收集, 减压除去收集液中的乙腈,冷冻干燥, 称重, 取少量溶于 0.1% TFA/水(浓度 1 mg/mL) 进行 HPLC 分析纯度,其余放置于 4℃冰箱保存备用。

1.5 GⅢA-1 的合成(碘氧化)

(1) 单环肽的碘氧化

称取 30.0 mg GⅢA-1-b 溶于 10 mL 反应溶剂(水: 乙腈: TFA=6: 3: 1, V/V)中, 加入 3 mL 碘/乙腈溶液(5 mg/mL) , 使溶液保持发黄的状态;

(2) 反应的终止

搅拌反应 30 min 后, 加入抗坏血酸水溶液(5 mg/mL) , 混匀, 使溶液呈无色澄清, 减压除去乙腈;

(3) 分析制备

取样 HPLC 分析, 收集主要产物, MALDI-TOF-MS 分析。 确定目标产物峰后,反应液经 HPLC 半制备柱制备, 收集目标产物, 减压除去多余乙腈, 冷冻干燥,称重, 取少量溶于 0.1% TFA/水(浓度 1 mg/mL) 用 HPLC 分析纯度, 其余放置于4℃冰箱保存备用。

2.1 结果与讨论

2.1.1 GⅢ A-1 树脂肽的合成(固相合成)

反应完成后, 取下树脂肽, 经 DCM 洗涤、 抽干后, 称重 1.6 g。

2.1.2 GⅢ A-1-a 的合成(合成和纯化线肽)

1.6 g 树脂肽经裂解、 沉淀、 洗涤后得粗肽 500 mg, 理论产量 600 mg, 产率83%。 粗肽用 HPLC 分析(图 2.3), 收集主峰峰尖并进行 MALDI-TOF-MS 分析确定目标峰位置。
150 mg 粗肽用 HPLC 制备得到线肽 GⅢA-1-a 60 mg, 产率 40%。 线肽用 HPLC分析(图3) , 收集主峰峰尖并进行 MALDI-TOF-MS 分析, 单同位素峰为 2692.4(图 4) , 与计算值 2692.2 相符。

2.1.3 GⅢ A-1-b 的合成(空气氧化)

30 mg 线肽经空气氧化过夜后, 取 50μ L 进行 HPLC 分析(图 5) , 分析表明原料已经基本消失, 收集主峰峰尖, 进行 MALDI-TOF-MS 分析确定。 氧化反应用制备柱纯化, 得到 20 mg GⅢA-1-b, 理论产量 30 mg, 产率 66%。 单环肽用 HPLC分析(如图 6) , 并进行 MALDI-TOF-MS 分析, 单同位素峰为 2690.6(图 6),与计算值 2690.7 相符。
2.1.4 GⅢ A-1 的合成(碘氧化)

单环肽经碘氧化 30 min 后, HPLC 分析表明, 存在两个峰, 收集主要产物,MALDI-TOF-MS 分析确定目标产物峰后, 反应液经 HPLC 半制备柱纯化, 得到 12mg GⅢA-1, 理论产量 20 mg, 产率 60%。 目标肽用 HPLC 分析(图7) , 收集主峰峰尖并进行 MALDI-TOF-MS 分析, 单同位素峰为 2546.1(图8) , 与计算值相符 2546.1。

2.1.5 讨论

本章主要通过 Fmoc 固相多肽合成法完成了 GⅢA 的合成。 在合成的过程中主要得到以下经验:

(1) GⅢA 是天然产物, 直接采用空气氧化法即可获得正确配对的产物合成中, 缓冲溶液的选择会影响其合成产率。 本论文中根据实验室经验选用胱氨酸-半胱氨酸-乙酸铵氧化体系, 获得了满意的产率。

(2) 在含两个二硫键的衍生物合成中, 线肽、 单环肽的制备都比较顺利, 但是单环肽碘氧化形成目 标肽时, 遇到了困难, 主要体现为部分肽的碘氧化反应不够彻底(HPLC 分析为两个大小接近的双峰) 、 产率低, 分析认为影响碘氧化的因素包括温度、 反应时间、 碘的用量, 而且每个肽的情形也不相同, 有的肽碘氧化迅速、 彻底, 但是有的肽转化很慢且产率很低, 需要进行预实验摸索条件。

(3) 构建两个二硫键时, 除了先进行空气氧化纯化得到单环肽再进行碘氧化外, 还可用“一锅法” , 即在空气氧化后, 用 TFA 将溶液调节为酸性, 直接进行碘氧化。 但是, 利用“一锅法” 合成不同的肽可能有不同的效果, 比如利用该法成功制得了 GⅢA-2, 但是制备 GⅢA-3 时目标肽发生丢失, 可能与不同肽的亲水性有关。

( 4) 在含一个二硫键多肽的合成中, 由于空气氧化时线肽浓度较低( 0.2mg/mL) , 为方便进样制备, 先旋蒸除去大量水, 一般剩余 50 mL 左右。 在 GⅢA-2,3 的首次合成中, 旋蒸时几乎将氧化液蒸干, 加入 0.1% TFA/水溶解后进行制备, 发现目标肽丢失。 重复该过程有相同结果。 分析原因应该是随着水不断减少,NH4 HCO 3 浓度不断加大, 使得溶液 pH(0.2 M NH4 HCO 3 溶液 pH 为 8.76) 上升,导致了多肽的水解。 因此, 除水过程应先将 pH 调至酸性。

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