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【请教】10nm以上的纳米金上能否直接连上蛋白
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 纳米生物类 | 理论技术 | 金、磁珠与抗体的结合 |
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dazhi7758
至尊木虫 (著名写手)
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免疫胶体金的制备及其在医学检验中的应用 石家庄都市网 日期：2007-10-27 编辑：hbsjz 胶体金是一种常用的标记技术，有其独特的优点。近年已在各种生物学研究中广泛使用。在临床使用的免疫印迹技术几乎都使用其标记。同时在流式、电镜、免疫、分子生物学以至生物芯片中都可能例用到。 1971年Faulk 和Taytor将胶体金引人免疫化学，此后免疫胶体金技术作为一种新的免疫学方法，在生物医学各领域得到了日益广泛的应用。目前在医学检验中的应用主要是免疫层析法( immunochromatogra-phy)和快速免疫金渗滤法(Dot-immuogold filtration assay DIGFA)，用于检测 HBsAg、HCG 和抗双链ＤＮＡ抗体等，具有简单、快速、准确和无污染等优点。 免疫胶体金技术的基本原理 氯金酸(HAuCl4)在还原剂作用下，可聚合成一定大小的金颗粒，形成带负电的疏水胶溶液。由于静电作用而成为稳定的胶体状态，故称胶体金。胶体金标记，实质上是蛋白质等高分子被吸附到胶体金颗粒表面的包被过程。吸附机理可能是胶体金颗粒表面负电荷，与蛋白质的正电荷基团因静电吸附而形成牢固结合。用还原法可以方便地从氯金酸制备各种不同粒径、也就是不同颜色的胶体金颗粒。这种球形的粒子对蛋白质有很强的吸附功能，可以与葡萄球菌Ａ蛋白、免疫球蛋白、毒素、糖蛋白、酶、抗生素、激素、牛血清白蛋白多肽缀合物等非共价结合，因而在基础研究和临床实验中成为非常有用的工具。 免疫金标记技术(Immunogold labelling techique) 主要利用了金颗粒具有高电子密度的特性，在金标蛋白结合处，在显微镜下可见黑褐色颗粒，当这些标记物在相应的配体处大量聚集时，肉眼可见红色或粉红色斑点，因而用于定性或半定量的快速免疫检测方法中，这一反应也可以通过银颗粒的沉积被放大，称之为免疫金银染色。 胶体金的制备方法 胶体金的制备一般采用还原法，常用的还原剂有柠檬酸钠、鞣酸、抗坏血酸、白磷、硼氢化钠等。下面介绍最常用的制备方法及注意事项。 １、玻璃容器的清洁：玻璃表面少量的污染会干扰胶体金颗粒的生成，一切玻璃容器应绝对清洁，用前经过酸洗、硅化。硅化过程一般是将玻璃容器浸泡于５％二氯二甲硅烷的氯仿溶液中１分钟，室温干燥后蒸馏水冲洗，再干燥备用。专用的清洁器皿以第一次生成的胶体金稳定其表面，弃去后以双蒸馏水淋洗，可代替硅化处理。 ２、试剂、水质和环境：氯金酸极易吸潮，对金属有强烈的腐蚀性，不能使用金属药匙，避免接触天平称盘。其１％水溶液在４℃可稳定数月不变。实验用水一般用双蒸馏水。实验室中的尘粒要尽量减少，否则实验的结果将缺乏重复性。 金颗粒容易吸附于电极上使之堵塞，故不能用pH电极测定金溶液的pH值。为了使溶液pH值不发生改变，应选用缓冲容量足够大的缓冲系统，一般采用柠檬酸磷酸盐(pH3～5.8)、Tris-HCL (pH5.8～8.3)和硼酸氢氧化钠(pH8.5～10.3)等缓冲系统。但应注意不应使缓冲液浓度过高而使金溶胶自凝。 ３、柠檬酸三钠还原法制备金溶胶： 取0.01％氯金酸水溶液100ml 加热至沸，搅动下准确加入１％柠檬酸三钠水溶液 0.7ml，金黄色的氯金酸水溶液在２分钟内变为紫红色，继续煮沸１５分钟，冷却后以蒸馏水恢复到原体积，如此制备的金溶胶其可见光区最高吸收峰在535nm，Ａ1cm/535=1.12。金溶胶的光散射性与溶胶颗粒的大小密切相关，一旦颗粒大小发生变化，光散射也随之发生变异，产生肉眼可见的显著的颜色变化，这就是金溶胶用于免疫沉淀或称免疫凝集试验的基础。 金溶胶颗粒的直径和制备时加入的柠檬酸三钠量是密切相关的，保持其他条件恒定，仅改变加入的柠檬酸三钠量，可制得不同颜色的金溶胶，也就是不同粒径的金溶胶，见附表。 附表 100 ml 氯金酸中柠檬酸三钠的加入量对金溶胶粒径的影响 １％柠檬酸三钠ml 0.30 0.45 0.70 1.00 1.50 2.00 金溶胶颜色 蓝灰 紫灰 紫红 红 橙红 橙 吸收峰(nm) 220 240 535 525 522 518 径粒(nm) 147 97.5 71.5 41 24.5 15 ４、柠檬酸三钠－鞣酸混合还原剂：用此混合还原剂可以得到比较满意的金溶胶，操作方法如下：取 4ml１％柠檬酸三钠 (Na3C6H5O7.2H2O)，加入0～5ml１％鞣酸，0～5ml 25mmo/L K2CO2（体积与鞣酸加入量相等），以双蒸馏水补至溶液最终体积为20ml，加热至60℃取1ml１％的 HAuCl4，加于79ml双蒸馏水中，水浴加热至60℃，然后迅速将上述柠檬酸－鞣酸溶液加入，于此温度下保持一定时间，待溶液颜色变成深红色(约需0.5～1小时)后，将溶液加热至沸腾，保持沸腾５分钟即可。改变鞣酸的加入量，制得的胶体颗粒大小不同。 ５、白磷还原法：在120ml双蒸馏水中加入1.5ml１％氯金酸和1.4ml 0.1mol/L K2CO3，然后加入 1ml五分之一饱和度的白磷乙醚溶液，混匀后室温放置15分钟，在回流下煮沸 直至红褐色转变为红色。此法制得的胶体金直径约 6nm，并有很好的均匀度，但白磷和乙醚均易燃易爆，一般实验室不宜采用。 要得到大小更均匀的胶体金颗粒，可采用甘油或蔗糖密度梯度离心，经分级后制得胶体金颗粒直径的变异系数（ＣＶ）可小于１５％。 免疫胶体金制备 １、蛋白质的处理：由于盐类成分能影响金溶胶对蛋白质的吸附，并可使溶胶聚沉，故致敏前应先对低离子强度的水透析。必须注意，蛋白质溶液应绝对澄清无细小微粒，否则应先用微孔滤膜或超速离心除去。 一般情况下应避免磷酸根离子和硼酸根离子的存在，因为它们都可吸附于颗粒表面而减弱胶体金对蛋白质的吸附。 ２、蛋白质最适用量的选择：将待标记的蛋白质储存液作系列稀释后，分别取0.1ml(含蛋白质5～40ug)加到 1ml胶体金溶液中，另设一管不加蛋白质的对照管，５分钟后加入0.1ml 10％NaCl溶液，混匀后静置２小时，不稳定的金溶胶将发生聚沉，能使胶体金稳定的最适蛋白量再加10％即为最佳标记蛋白量。 ３、标记：在接近并略为高于蛋白质等电点的条件下标记是比较合适的，在此情况下蛋白质分子在金颗粒表面的吸附量最大。 下述标记步骤最为常见： ①用0.1mol/L K2CO3或0.1mol/L HCl调节金溶胶至所需pH(标记ＳＰＡ时调到pH6.0)。 ②于100ml 金溶胶中加入最佳标记量的蛋白质溶液（体积为２～３ml），搅拌２～３分钟。 ③加入5ml１％PEG20000溶液。 ④于10000～100000g离心30～60分钟（根据粒径大小选择不同离心条件），小心吸去上清液（切忌倾倒）。 ⑤将沉淀悬浮于一定体积含0.2～0.5mg/ml PEG20000的缓冲液中，离心沉淀后，再用同一缓冲液恢复，浓度以 Ａ1cm/540nm=1.5左右为宜，以 0.5mg/ml叠氮钠防腐，置4℃保存。 ⑥包被后的金溶胶也可浓缩后于Sephadex G-200柱进行凝胶层析分离纯化，以含 0.1％ＢＳＡ的缓冲溶液洗脱。通常用IgG包被的金溶胶洗脱液pH为8.2，以Ａ蛋白包被的金溶胶洗脱液为pH7.0。 以上操作中应注意，一切溶液中不应含杂质微粒，可用高速离心或微孔滤膜预处理。 胶体金的稳定性及免疫胶体金的贮存 胶体金具有很高的动力学稳定性，在稳定因素不受破坏时自身凝聚极慢，可放置数年不发生凝聚。影响稳定的因素主要有电解质、溶胶浓度、温度、非电解质等。 金溶胶必须有少量电解质作稳定剂，但浓度不宜过高。高浓度亲水性非电解质能剥去胶粒外面的水化膜使其凝聚。少量的高分子物质促使溶胶凝聚，但一定量的高分子物质反而可增加溶胶稳定性，如蛋白质、葡萄糖、PEG20000等的加入有良好的稳定效果。 当金溶胶吸附蛋白质后，溶胶的稳定性随溶液pH而变化，而这种变化又取决于吸附蛋白质的等电点，如ConA，过氧化物酶等，当pH较低时保持稳定，提高pH则显得不稳定，接近等电点或略高时又变得稳定了。标记后的胶体金溶液可用0.2～0.5mg/ml PEG20000 作为稳定剂。在4～10℃贮存数月有效，不宜冰冻。贮存中可能会发生程度不同的凝聚，可离心除去。 免疫胶体金的应用 １、胶体金在电镜水平的应用 胶体金应用电镜水平的研究最早，发展最快，应用最广泛。其最大优点是可以通过应用不同大小的颗粒或结合酶标进行双重或多重标记。直径为3～15nm 胶体金均可用作电镜水平的标记物。3～15nm 的胶体金多用于单一抗原颗粒的检测，而直径15nm 多用于检测量较多的感染细胞。 胶体金用于电镜水平的研究，主要包括：①细胞悬液或单层培养中细胞表面抗原的观察。②单层培养中细胞内抗原的检测。③组织抗原的检测。 金标记在电镜水平的应用，主要方法包括：包埋前染色、包埋后染色、免疫负染色、双标记技术和原位杂交技术等。 实验证明，该法样本用量少、检测速度快、对比明显、操作简单、敏感性和特异性高，既可用于抗原检测，也可用于抗体检测，因此，可同时适用于科研和诊断。 ２、胶体金在光镜水平的应用 胶体金同样可用做光镜水平的标记物，取代传统的荧光素、酶等。各种细胞涂片、切片均可应用。主要用于：①用单克窿抗体或抗血清检测细胞悬液或培养的单层细胞的膜表面抗原。②检测培养的单层细胞胞内抗原，③组织中或亚薄切片中抗原的检测。 胶体金用于光镜水平的研究，可以弥补其它标记物不可避免的本底过高和内部酶活性干扰等缺点。 ３、胶体金在流式细胞仪中的应用： 应用荧光素标记的抗体，通过流式细胞仪计数分析细胞表面抗原，是免疫学研究中的重要技术之一。但由于不同荧光素的光谱相互重叠，区分不同的标记困难，因此必须寻找一种非荧光素标记物，用于流式细胞计数。这样可以同时进行几种标记。该标记物必须能够改变散射角，胶体金可以明显地改变红激光散射角，因而可以作为流式细胞仪的标记物之一。 ４、凝集试验：单分散的免疫金溶胶呈清澈透明的溶液，其颜色随溶胶颗粒大小而变化，当与相应抗原或抗体发生专一性反应后出现凝聚，溶胶颗粒极度增大，光散射随之发生变化，颗粒也会沉降，溶液的颜色变淡甚至变成无色，这一原理可定性或定量地应用于免疫反应。 ５、免疫印迹技术(immunoblotting)：免疫印迹是一种较新的免疫化学技术。用聚丙烯酰胺凝胶电泳将蛋白质分离，得到的区带转移至硝酸纤维素膜，然后用酶免疫法（或免疫荧光、ＲＩＡ）进行定量。 免疫胶体金也可用于该法的定量。转移后的硝酸纤维素膜与某特异性的抗体保温后，再与经葡萄球菌Ａ蛋白致敏的胶体金温育，彻底洗去多余的胶体金，根据膜上胶体金颗粒颜色深浅可测知样品中的特异性抗原。 利用金颗粒可催化银离子还原成金属银这一原理，采用银显影剂增强金颗粒的可见性，更可大大提高测定灵敏度，检测下限可低至 0.1ng，这种免疫金银染色法应用已日趋广泛。 由于胶体金免疫印迹技术简便、快速，且有相当的高的灵敏度，在临床免疫诊断上有很大的应用潜力。 ６、胶体金在肉眼水平的应用 胶体金取代传统三大标记物，用于肉眼水平的免疫检测中。除了胶体金本身具有的特点外，还有以下优点：①试剂和样本用量极小，样本量可低至1～2ul；②不需γ－计数器、荧光显微镜、酶标检测仪等贵重仪器，更适于现场应用； ③没有诸如放射性同位素、邻苯二胺等有害物质参与；④实验结果可以长期保存；⑤时间大大缩短，提高了检测速度。金标过程中，无共价键形成，是一定离子浓度下的物理吸附。因此几乎所有的大分子物质都可被金标记，标记后大分子物质活性不发生改变。实验结果表明，胶体金的敏感性可达到 ELISA的水平。而结合银染色时，检测的敏感性更大大提高。 胶体金在免疫层析快速诊断技术中的应用 免疫层析法(immunochromatography)是近几年来国外兴起的一种快速诊断技术，其原理是将特异的抗体先固定于硝 酸纤维素膜的某一区带，当该干燥的硝酸纤维素一端浸入样品（尿液或血清）后，由于毛细管作用，样品将沿着该膜向前移动，当移动至固定有抗体的区域时，样品中相应的抗原即与该抗体发生特异性结合，若用免疫胶体金或免疫酶染色可使该区域显示一定的颜色，从而实现特异性的免疫诊断。 早孕诊断用的免疫层析试纸条（通常又叫尿妊纸条）的装配结构见图一。 装配方法：在塑料底板上分别将吸尿用玻璃纤维、冻干金标记抗α－HCG玻璃纤维、已固定有抗β－HCG抗体的NC膜及硬质吸水滤纸按图装配，配件与塑料底板的结合可用双面胶或其它粘性材料粘接。装配好的纸板按纵向剪切，裁成宽 度为4mm的条状，即为尿妊用纸条。 本法检测速度快，一般一两分钟可出结果；灵敏度高，可达50IU/L；好的试纸条结果也是准确可靠的，这是其所以能在尿妊诊断中得到广泛应用的主要原因。尿妊试纸条的快速特性来源于胶体金免疫层析法的固有特性，但与原材料选择特别是NC膜的孔径大小密切相关，准确性取决于抗β－HCG的特异性。 金标尿妊纸条虽然好用，但在使用中也必须注意以下几个方面：一是温度，试纸条虽然可在室温保存，但大批暂时不用的试纸条还是应该放在４℃保存，以免抗体失效，从冰 箱刚取出的试纸条则应待其恢复至室温，然后才打开密封，可避免反应线模糊不清。二是正确操作，一般的操作方法是在试纸条的吸尿玻璃端滴入２滴（约１００微升）尿液，或将吸尿端直接插入标本中，深度约１０～１５毫米２０秒，取出后平放，这种方法比较麻烦且容易造成污染。我们的方法是取尿标本约0.5ml 加入小试管中，然后插入试纸条，待１～２分钟反应带清晰后观察结果。 胶体金在快速斑点渗滤技术中的应用 ＥＬＩＳＡ法在临床实验室已得到普遍的应用，特别是用于各型肝炎标志物的检测。但ＥＬＩＳＡ法由于操作程序复杂，时间较长，给实验室带来不便。因此出现一步法快速检测试剂盒，虽可提高检测速度，但有出现假阴性结果的弊端。ＥＬＩＳＡ法需时较长的主要原因，是由于液相中的抗原（或抗体）需经扩散才能与固相上的抗原或抗体反应不适当地缩短反应时间，将使灵敏度降至临床要求以下。为满足临床快速检测的需要，近年来发展了多种简便、快速的免疫学检测方法，快速斑点渗滤法即为其中一种，其标记物质用胶体金即称为快速斑点免疫金渗滤法Dot-immunogold filtration assay)，又称滴金免疫法。 快速斑点渗滤法的基本原理仍是间接法或夹心法。间接法测抗体：固定于膜上的特异性抗原＋标本中的相应抗体＋金标记的抗抗体或ＳＰＡ显色。夹心法测抗原：固定于膜上的多克隆抗体＋标本中待测抗原＋金标记的特异性单克隆抗体显色。 结果判断：快速斑点免疫金渗滤法在操作完成后即可直接观察结果。根据测定模式的不同可有以下不同的判定结果。 快速斑点免疫金渗滤法检测速度快，结果观察一目了然，已应用于多种临床检测项目。 以上分析可以看出，胶体金标记技术是继三大标记技术之后，又一较为成熟且已得到广泛应用的免疫标记技术。 从网上复制下来保存着的，忘了出自哪里了 |
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还有这个 【目的】 保证免疫金标技术检验准确性 【本SOP适用范围】 免疫金标技术 【该SOP变动程序】 本标准操作程序的变动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：专业主管、科主任。 【原理】 氯化金分子在还原剂作用下聚合形成金颗粒，颗粒与颗粒之间因静电作用而相互排斥，使其保持一个比较稳定的胶体状态，故称作胶体金。利用胶体金颗粒的高电子密度及其表面能结合生物大分子(如抗体、SPA、植物血凝素和刀豆蛋白A等)以 及具有一定颜色等特性，可用光镜和电镜对细胞内抗原进行定位、定性的研究。 【方法学分类】 1. 班点金免疫渗滤试验 固相膜免疫测定中液体在微孔膜中穿过流出呈穿流形式，为斑点金免疫渗滤试验(dot immunogold filtration assay，DIGFA)，亦有称免疫金溶胶斑点法、滴金免疫测定法等。试验单位为三层反应盒，第一层为过滤器(滤纸层)，第二层为反应膜(NC膜或MC膜)上点加有特异性抗原或抗体，第三层为吸水垫料，有称此渗滤装置为滴金反应板。 以双抗体夹心法测dsDNA为例：试验中将标本加在反应盒上，血清(标本)透过过滤层进入反应层，反应层上点有“一”字形抗IgG(或某种人血清蛋白作为试验阳性对照)及“．”形被测物相应抗体，血清中抗原与反应层中抗体结合，其余无关蛋白等滤出膜片，加入金标记抗体试剂，反应膜上“一”字形及“．”形均显红色为试验阳性，仅“一”形显红色为试验阴性(试剂盒状态良好)，“一”不显色提示试剂盒质量不合格，需另取反应盒重做试验。 试剂盒基本试剂成分有滴金反应板、金标记试剂及洗涤液。 2. 斑点金免疫层析试验 固相膜免疫测定中液体通过毛细管作用在膜上向前移行呈横流形式，为斑点金免疫层析试验(dotimmunogoldchromatographyassay，DIGCA)。试验单位为一滤膜条，自上而下分有多个层次。 如单克隆双抗体法测HCG，滤膜条各区域分别为：吸水滤纸—固定有金标二抗的MC膜—固定有抗β-HCG抗体的MC膜—金标记抗。α-HCG玻璃纤维—吸尿玻璃纤维。试验中将滤膜条浸入被测尿液或滴加尿液，尿液在毛细管作用下向试纸条上端缓缓移行，尿液将金标抗。α-HCG溶解并带动它向前移动，结合尿中HCG至抗β-HCG抗体处形成复合物，并在抗β-HCG抗体固定处显示胶体金特有红色，提示试验阳性。尿中无HCG时，溶解的抗α-HCG至固定有金标二抗的MC膜处显示胶体金特有红色(质控线条)，提示试验阴性。 试剂盒基本单位仅有一滤膜条，只有一步操作。 3. 胶体金颗粒的制备 在氯化金溶液中加入不同的还原剂，可制备出不同大小的金颗粒。常采用柠檬酸、抗坏血酸和白磷。用这三种还原剂可分别制备出大、中、小三种主要胶体金颗粒。目前，有更多的实验室仅以柠檬酸为还原剂，在柠檬酸还原氯化金时，加入不同量的单宁酸即可获得大小不同的金颗粒，所制备金颗粒的大小非常一致。 [1] 以抗坏血酸为还原剂制备10～15nm直径的胶体金(Au l5) 在一个洗净烤干的250 ml容量的三角烧瓶中，加入20ml三蒸去离子水(3DW)、l ml 0.1 mol/L K2CO3和l ml％氯化金水溶液于冰浴中混匀，立即加入l ml 0.7％ 抗坏血酸，并充分摇动至溶液呈紫红色，加3DW至100ml，100℃水浴5min后，溶液变成红色，放室温冷却待用。 [2] 以柠檬酸为还原剂制备8～10 nm直径的胶体金(Au l0) 125 ml 3 DW煮沸后加入1％ 柠檬酸7.5 ml，再煮沸5 min，迅速加入1.25 ml％氯化金溶液，100℃水浴15 min，溶液置室温待用。 [3] 以柠檬酸为还原剂制备5—6 nm直径胶体金(Au 6) 将l ml氯化金加入100 ml 3DW中煮沸，快速加进2．45ml柠檬酸—单宁酸的混合液(2 ml 1％ 柠檬酸三钠、0.45 ml 1％ 单宁酸)，继续煮沸5 min，放室温待用。 [4] 白磷为还原剂制备5 nm直径的胶体金(Au 5) 将120 ml 3DW、1.5 ml％氯化金和2.7 ml 1 mol/L K2CO3，混合，缓慢搅拌中快速加进l ml白磷一乙醚溶液，室温轻搅拌15 min，100℃水浴30 min后放室温待用。 胶体金制备一般需在中性pH(7.2左右)条件下进行，也可在稍偏酸或稍偏碱的环境中进行。制备的胶体金其大小和形状可在电镜下观察确定。一般胶体金溶液呈红葡萄酒颜色，大颗粒胶体金是紫红色。正常情况下，胶体金溶液应清澈而不含任何可见的沉淀或漂浮物，如溶液、试剂、瓶皿等不干净。将造成如下结果：第一不能获得预期大小的胶体金颗粒，第二将影响到下一步生物大分子的吸附过程和包被后胶体金的稳定性。因此，为了获得满意的胶体金，应选择最纯净的各有关试剂和液体。如有条件，所有试剂最好经过超过滤处理，以除去其中的分子聚合体和可能混入的杂质块。制备过程中所用的水以三蒸去离子水最合适，各类器皿均应严格清洗，盛胶体金的瓶皿先经过硅化则更为理想。胶体金颗粒在吸附生物大分子之前具有一定的稳定性，4℃可存放一周左右，如果经超过滤和透析处理后加0.002％ 叠氮钠，能保存5个月左右。 4. 胶体金和生物大分子的结合 任何蛋白质都能结合到胶体金颗粒表面，胶体金和蛋白质结合后，并不影响蛋白质的反应性。 [1]生物大分子的准备 盐类成分能影响胶体金的吸附能力，并使胶体金颗粒发生聚集，因此，生物大分子在包被金颗粒前，常需透析，使溶液无盐或盐的浓度极低，常用的透析液为0.003ml/L NaCI。 [2]胶体金颗粒的包被 以生物大分子包被胶体金颗粒时，首先需要确定其精确用量，即蛋白质完全包被胶体金所需蛋白质的最小剂量。因为过多或过少地结合生物大分子均可使胶体金呈不稳定状态，它们的最佳浓度可通过如下方法获得。 制备好的胶体金以0.1mol/L K2CO3，调pH至6.2(SPA的等电点)待与SPA结合。用一个滴定盘或一排小试管，以0.005mol/L NaCl连续稀释50μl SPA(1mg／m1)至第十孔或第十管为止。然后，分别于每孔中加入250μ1的胶体金，5min后再加入250μ1 10％ NaCl，l min后震荡试管，这时SPA浓度较低的孔中，胶体金由红色变为紫色，说明SPA的量不足以包被胶体金。以胶体金未改变颜色，且SPA浓度最稀一孔胶体金与SPA的比例，计算出全部胶体金溶液所需SPA的总量，最后以10～20％过量加入到胶体金中，结合2—5min，再加入1％ 聚乙二醇(MW 20，000)至最终浓度为0.05％，以进一步稳定包埋后的胶体金。 [3]胶体金的浓缩纯化及储存 包被好的胶体金可用离心的方法使稳定的金颗粒沉淀于管底，而与多余的蛋白分开，使探针得以浓缩和纯化。将SPA—金颗粒复合物加到几个洗净的离心管中，再于离心管底部加进3—6 ml 5％ 甘油、0.05％聚乙二醇、0.02％叠氮钠的混合液垫层。纯化2—5nm的金探针时，以125，000×g离心45min(4℃)；纯化8～15nm直径金探针时，以60，000×g离心45~60min(4℃)。离心后SPA—金颗粒复合物浓缩于管底部，呈暗红色，尽量吸去无色上清后，收取暗红色层，而紧挨管壁的致密凝集块不应收集。浓缩纯化的胶体金探针置4℃保存待用，有效期约6个月。 【临床应用】 应用范围 包括感染性疾病抗原、抗体检测，如HBsAg、疟原虫抗原、TB—Ab、HP—Ab、HIV—Ab等；各种蛋白质抗原检测，如AFP、CEA、肌红蛋白、肌钙蛋白、尿微量白蛋白、OB等；激素检测，如HCG、LH、FSH、TSH等；药物检测，如吗啡、可卡因等。适用范围一般为定性试验。 【金标记方法学特点及质量控制】 特异性与ELISA相似，敏感性略低于ELISA。定性检测时单个操作(NC膜条或NC反应块)、检测快速(胶体金本身为红色，不需加发色试剂，阳性反应即出现红色斑点或条带，整个操只需5—30分钟)、操作简便(蘸取或滴加标本、试剂即可)、不需特殊设备(手工)、结果明确(显红色，肉眼观察)，且金标记物稳定，冷冻干燥后可在室温长期保存。金标记方法学尤其适合个人保健、床边检测、基层卫生单位检测、急诊检验、新项目小标本量筛查等。 金标记方法学的局限性在于不易准确定量(变异系数大)、不易自动化分析、试剂成本偏高及质量控制困难。金标记法商品化试剂盒众多，无统一管理，存在问题有： 1.命名与方法学有时不符，方法学表示不明确，包被物与检测物表示不明确。 2.各厂家生产产品质量不一，无比较尺度。 3.试剂盒没有标出敏感性(有时即使标出也不相符)及检测上限(有发生前带)，敏感性及临界值标准不统一，造成一些疾病诊断上的假阴性、假阳性。 4.结果不稳定、重复性不满意，试剂盒应有低浓度标准测试重复性。 5.室内质控无有效方法：试剂盒中质控点或质控线中包被的是与标记结合物能直接结合的物质，仅能作为试验过程是否有效的参考指标(标记结合物是否失效、层析过程是否正常、被测物中有无干扰物质等)，不能反映敏感性、特异性、重复性等质量指标；室内质控应有质控物(应有低浓度)经常检测试验条(卡)有否呈色、呈色时间、呈色深浅，将敏感性及敏感性改变作为质控要点。 6.没有试剂盒批检。 【半定量与定量】 在测定一般正常体液中存在而在疾病时升高的物质时，如单以超过正常参考值上限为阳性界限往往不能满足临床要求。胶体金显色深浅与被测物浓度有一定相关性，因此可对被测物进行定量检测。 【金标半定量】 1.DIGFA：可用标准色阶对比法及质控标准对照法。标准色阶对比法是以与被测物浓度相对应的深浅不同的色带板与被测反应板显色斑点对比估计被测物浓度；质控标准对照法是以质控品同时测定对比色泽半定量。 2.DIGCA：可用质控线对比法及多条测定线法。质控线对比法质控线色泽为临床临界浓度显色。多条测定线法在NC膜上置多条受体线(抗体或抗原)，显色线条数与被测物浓度相关，或显色线第几条与被测物浓度达到多少浓度相关。 【金标定量】 1.DIGFA：膜上斑点免疫金标显色终点时用光电比色， 2.DIGCA：由于反应在NC膜上呈横流推进，测定线上反应出现的颜色逐渐加深，液流速度、反应温度等为可变因素，很难在规定时间得到恒定结果。 |
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2008guoym
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