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[交流] 动物实验的日常操作--小鼠骨髓间充质细胞元代分离

BMSCs来源方便,易于分离、培养、扩增和纯化,多次传代扩增后仍具有干细胞特性,免疫原性低。但是不同的分离培养方法使得BMSCs在体外扩增时的纯度、活性、表型和分化潜能差异很大,导致基础研究结论各异和临床试验效果不一。因此,深入认识BMSCs不同分离方法和培养条件的优缺点,并根据实验目的做出相应选择,是进行BMSCs实验研究的关键环节。

目前用于分离BMSCs的方法主要有五种,分别是贴壁筛选法、骨组织消化法、密度梯度离心法、流式细胞仪分离法和磁珠分选法。

下面向大家详细介绍贴壁筛选法,对初次培养者来说,贴壁法分离BMSCs操作简单易掌握,不易发生污染,是一个较好的分离方法。不足的是分离提取的细胞纯度相对不高。

贴壁筛选法

贴壁筛选法是利用细胞贴壁时间及贴壁牢固性的不同,逐步将非贴壁细胞和其它杂质细胞去除的一种简单易行的方法,常用于干细胞的培养中,因此用于分离BMSCs最为广泛。

利用BMSCs贴壁生长特性,更换培养液逐步去除漂浮生长的造血系统细胞即可获得较纯化的BMSCs;而且骨髓中的造血干细胞能分泌生长因子和促贴壁物质,可促进BMSCs贴壁生长,贴壁筛选法也常被称为直接培养法或者全骨髓法。

操作步骤

以颈椎脱臼法处死SPF级3-4周龄C57BL/6J小鼠或者SD/Wistar大鼠,用75%乙醇浸泡。

随后在鼠的腿的位置剪开外皮和内皮,无菌状态下取出双侧股骨和胫骨,浸泡于无菌含双抗PBS溶液中。剔除股骨和胫骨周围的肌肉、结缔组织,用含双抗的PBS溶液清洗三遍。

用眼科剪剪去股骨和胫骨的两端,暴露骨髓腔。

用注射器以完全培养基反复冲洗骨髓腔直至骨头发白。

收集骨髓液,离心,后加入适当培养基(含20%血清)接种于培养基皿中置于37℃,5% CO2,饱和湿度的细胞培养箱中培养。

24-48h后去悬浮,接下来的每3天换液一次,直到需要传代。
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