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北京艾柏森铁虫 (小有名气)
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免疫组化：非特异性染色的八大原因
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免疫组化，免疫组织化学技术（immunohistochemistry），是一项利用抗原抗体反应，通过使标记抗体的显色剂显色来确定组织细胞内抗原，对蛋白定位，定性的实验技术。 非特异性染色的八大原因 然而，结果却未必都是那么如意的，常常出现下面这种状况，好好的一张片子染得脏脏的，这就是最常见的非特异性染色。 1. 抗体问题，真的是一分钱一分货啊！ 一抗用多克隆抗体容易出现非特异性染色，建议用高纯度，高效价的针对更具特异性抗原决定簇的单克隆抗体来解决。单克隆抗体很贵，不过结果真的很好。尤其是背景非特异性染色不会太深。真是一分价钱一分货。一抗过期也会造成杯具，所以要注意抗体的有效期。 2. 抗体浓度过高/孵育时间过长 一抗浓度太高也是出现非特异性染色的常见原因。解决的办法就是预实验。每次使用新抗体前应该多做预实验，摸索出zui理想的工作浓度，不能简单地按照说明书来用。另一个常见原因就是孵育时间过长。解决的办法就是定时器。加上抗体后，立刻调好定时器，提醒自己及时终止反应，就会避免这个问题。 3. dab染色时间太长/变质 dab的孵育时间过长，会造成背景非特异性染色。dab的显色时间不是一成不变的，主要靠自己在显微镜下盯着，一旦出现浅浅的棕色的时候，就要马上冲洗。出现棕色的时间过短，表明抗体浓度过高；出现棕色的时间过长，表明抗体浓度过低。dab要保存于避光干燥的地方，现用现配，临用前才加入h2o2。图1就冲洗的有些晚了；图2就是刚刚好，染色效果棒棒哒! 4. 内源性酶和生物素 内源性酶和生物素也会造成非特异性染色，特别是一些内源性酶生物素含量丰富的组织，如肝脏，肾脏，脾脏等。处理的办法为：灭活碱性磷酸酶：zui常用的方法是将左旋咪唑（24 mg/ml）加入底物液中，并保持ph值在7.6-8.2，即能除去大部分内源性碱性磷酸酶；对于酸性磷酸酶，可以用50 mmol/l的酒石酸抑制；对于内源性过氧化物酶，可以用0.9%的双氧水来灭活。对于内源性生物素，染色前将切片浸于25 μg/ml亲和素溶液中15分钟，pbs清洗15分钟后即可染色。也可以24 mg/ml的卵白素封片15分钟。 5. 组织变干 一下子染太多片子的时候，容易出现这种情况。解决的办法就是不要贪多嚼不烂。一次少染几张。还有就是试剂充分覆盖组织，超出组织边缘2 mm。然后用pap笔在组织周围画一个圈圈，把修复液圈在里面。避免修复液流走。圈圈应该距离组织边缘3-4 mm。 6. 浸泡时间过长 切片在缓冲液或修复液里面浸泡过夜，也会引起杯具。这都是偷懒的做法。但是有时候也是可以偷一下懒的。毛博的独门秘技就是4°c冰箱。只要把容器放在4°c冰箱里，过夜完全没有问题。 7. 清洗不充分 清洗一定要充分。pbs液一定要双蒸水新配，用之前再次测ph值。缓冲液用0.05 mol/l的tris-hcl，0.15 mol/l的nacl即可。如果加一点去垢剂tween-20就更好了。 8. 封闭血清问题 是否选择了正确的封闭血清。原则是选择二抗动物的非免疫血清，例如二抗是羊抗兔，就要选择非免疫羊血清。用pbs稀释为3-10%的溶液孵育切片，37°c 10-30分钟。这里不用洗，直接甩掉即可。毛博再贡献一个独门绝招，直接用奶粉也可以。用5%的脱脂奶粉就可以了。而且效果还不错。怎么样？简单吧。 [ Last edited by 小冀- on 2021-11-10 at 11:09 ] |
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