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小四2228金虫 (正式写手)
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【求助】怎么在水体中分离藻类
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最近发现要做藻类实验的时候,自己要培养的藻类往往长的很慢,请问各位有什么方法来从含藻类丰富的水体中来分离不同种类的藻,谢谢~~ |
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古木
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介绍几种分离的技术: 1. 毛细管清洗技术 选择直径为3~4mm的软玻璃管,或者其它任何适合拉成毛细管的巴氏滴管,用镊子夹住滴管的前端,放在酒精喷灯的外焰上,直到玻璃变软,迅速移离火焰,同时快速拉成毛细管。由于拉的时候的力度和掌握时机的不同,毛细管的口径会有不同,所以经常练习,达到熟练,可以将毛细管拉成自己需要的口径,即刚刚适合要挑取的藻细胞进入的大小。然后用镊子把毛细管头端夹断,注意夹断的时候的用力均匀,尽量要保证毛细管口平滑,避免成为锯齿状边缘。在管的另一段加上胶吸头或者软的橡皮管。 用滴管吸取少量采集样品滴在灭菌后的点滴板上的凹陷上,置于解剖镜下观察。如果样品中藻细胞浓度很大,种类繁多,可以将样品用蒸馏水或者培养基稀释。然后在至少6~12个凹陷上滴入蒸馏水和培养基。在解剖镜下观察,移动毛细管的细管头在需要挑取的细胞上,小心进入液体中,迅速挑取,将细胞排放在另一个装有蒸馏水或者培养基的凹陷里。用以上方法挑取12~15个单细胞,然后在装有蒸馏水或者培养基的凹陷中清洗6~12次,每清洗一次,必须重新拉一次毛细管。 经过有效的清洗,将最后得到的单细胞放在8个装满培养基的灭菌过的小试管中,放在适合被挑取藻生长的光照条件和温度条件下,开始培养,3~6周后即可以镜检看是否生长了。 用毛细管分离的方法分离丝状藻类,按照以上所述的方法拉一根毛细管,前端带上一小钩,小心勾住藻样中的一根单丝体,分离出来,在点滴板的凹陷清洗6~12 次。清洗结束后,取一含0.5%~0.75%低浓度的agar平板,将清洗后的藻丝体在平板上拖动几次,除去丝体表面的一些体表寄生菌。 2. 喷雾技术 1964年,Wiedemanl.建立了一种相对简单的技术,既可以分离,也可以用来纯化。首先灭菌一批15ml的离心管,取8~9ml藻样放入离心管,调节转速2000rpm,离心45~90秒,去除上清液,然后加入蒸馏水或者灭菌后的培养基,重复以上操作12次左右。经过最后清洗,倒去2ml上清液。取15cm长的小滴管拉成毛细管(毛细部分长度需略长于离心管),将该毛细管夹断,使毛细部分略长于离心管,插入到离心管底部,离心管口用棉花塞住,毛细管留出一部分在棉花之上。将离心管直立固定在铁架台,将压缩空气通过一灭菌过的滴管放出,喷在毛细管头部,这把从离心管底部通过毛细管出来的藻细胞均匀吹出,在距离离心管25cm处放置一个灭菌过的agar培养皿,这样经压缩空气喷出的藻细胞就到达平板上。喷雾结束后,将agar用parafilm膜密封好,置于适当培养条件下培养,几天后,单细胞的藻,或者单藻落长出来,可以在无菌的条件下用毛细管挑出来,放入灭菌后的液体培养基培养。 3. 其它技术 这里介绍几种其它的分离技术。 倒平板法: 制作营养成分相对较少的固体培养基,灭菌后冷却,当培养基已经变凉但还未凝固的时候,取少量采集样品,与之混合,搅拌,倒在灭菌后的培养皿上,等它凝固,密封培养。培养一周左右,将生长出来的单克隆从原培养基上割下来,放入新鲜的培养基继续培养。 划平板法: 当藻单元的直径小于10µm时,最容易的分离方法就是划平板或涂平板法。这两者中的任何一种分离方法,都可能得到无菌的培养物。准备一个装有用琼脂(1-1.5%)固化的培养基的培养皿,滴1-2滴自然采集物于琼脂的边缘。用火焰灭菌一个线环,或者一弯玻璃棒(将棒浸入70%酒精溶液,放在火焰上点燃并移离火焰;重复几次。)使用无菌的线环或玻棒,在无菌条件下将滴在琼脂上的自然采集物滴平行划在琼脂表面上。如有需要,可用蜡笔(记号笔)在培养皿的外底部划线标记,在合适条件下培养4-8天,然后在显微镜的高倍镜下观察,检查该样品是否为单藻株。将挑得的单克隆利用上述方法再划平板,让其再长出新的藻落。第二次划平板可以减少细菌污染藻落的可能性,也使各藻落更趋于来自同一藻单元。最后,从目的藻落挑取藻单元到液体或琼脂培养基。 涂平板法: 该方法与划平板法相似,只是它是将藻单元涂抹在琼脂培养基的表面,而不是用线环划线。 准备一个培养皿,用巴斯德吸管吸一滴自然采集物,将其固定在桌子上,细端离开桌面向上倾斜。在其粗端套上气泵,使在其细端产生较高压力的空气流。一手持有琼脂培养基的培养皿,使培养的琼脂表面与产生气流的细管垂直,距离约200mm。一手持吸有自然采集物的巴斯德吸管,对准高速空气流挤出采集物液滴,使在高速空气流下产生的水雾均匀喷洒在琼脂培养基表面,密封培养。培养一周左右,在显微镜的高倍镜下观察,检查该样品是否为单藻株,将挑得的单克隆转移到液体或琼脂培养基。 |
8楼2009-08-15 16:46:09
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2楼2009-08-06 18:42:31
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