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茯苓鸭

新虫 (初入文坛)

[求助] α-葡萄糖苷酶抑制活性实验 已有1人参与

一、目前在体系优化,遇到的问题是:未出现平台期,每次实验所得数据有一定差距,曲线趋势不统一,无法确定最适酶浓度和底物蔗糖浓度,希望有前辈能提些建议。
二、实验用的方法是:
①0.1M的PBS 70ul和20ul酶混合预热10min,(空白组为不加酶,其他条件皆一致)
②加入20ul蔗糖反应30min,
③加入100ul的0.2M的碳酸钠终止,(以上反应在1.5ml的离心管内完成,与在酶标板内反应所得数据对比而言,前者反应更充分)
④取50ul反应液,往其中加入150ul葡萄糖工作液,再反应15min后酶标仪测OD。
三、但在体系优化这个环节就出现了问题,我参考文献,选取1.0U/ml的酶,加入不同浓度蔗糖(10、20、40、60、80、100、120、140、160mmol/l)但没有平台期,蔗糖60与80这边较平,但160的OD又很高。之后又重复了好几次,但是曲线规律不统一,仍然无法确定最适蔗糖浓度,但文献里又做出来了,不清楚我到底漏了什么细节,希望做过类似实验的前辈能指导一下。(ps先前我增加过终止液的浓度后,发现有平台期,但是测出来的数据太小了,意义不大。)

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冼亮淀粉酶

专家顾问 (知名作家)

生物大分子降解酶

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
茯苓鸭: 金币+5 2021-02-19 21:47:41
1. 葡萄糖氧化酶法是基于生物催化的方法来测定葡萄糖的含量,受pH的影响,所以试剂盒的说明书里是建议受测样品体积:GOD试液=1:10。在测定抑制剂效力的反应时间到了之后加入碳酸钠会使pH值升高,但你在使用GOD试液的时候却是受测样品体积:GOD试液=1:3,GOD试液自带的缓冲系统不足以抵消样品所带缓冲液的冲击,使GOD的显色反应不能在最适pH进行,建议参考说明书进行。

2.我用过GOD法,是反应时间到了之后沸水浴灭活,受测样品体积:GOD试液=1:10。我也试过加碳酸钠来制止反应,但最终选择了沸水浴。

3.GOD法是有线性范围的,葡萄糖的含量超过一定范围后线性变差,在葡萄糖含量倍增时,增加的读数值小于1倍,并且在葡萄糖含量继续倍增后读数的增幅继续减小。即,假设葡萄糖含量为0、1、2、4、8、16,读数可能为0、1、2、4、7、10,含量为8时已超出该方法的线性范围。线性范围受显色温度和时间影响,要自己摸索,并注意所得结果能够重现。

4.你的步骤描述不全面,抑制剂在哪一步加?你以蔗糖作为α-葡萄糖苷酶的底物?要描述全面才行。
流星来时我许了个愿,愿我有吃有喝还有舒服的猪圈。讨厌发帖前不搜索论坛重复发帖和仅把论坛当解决问题工具,久不看论坛一来就提问者,宁弃EPI和VIP也不回帖。
6楼2021-01-27 16:58:00
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