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动物实验试剂的使用和保存(一些小经验)
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一是配制试剂的容器的选择。通常我们会选择身边一切可利用的容器。用得比较多的是玻璃瓶。小的有青霉素瓶，又称西林瓶。极少量的试剂可以用子弹头型的Doff管来装。大一点的有输液瓶，有100ml,250ml,500ml的不等。酌情使用。比较大的可用装蒸馏水的瓶子，一般有1升到5升，甚至10升的。有时也可用一些高分子材料的瓶子装试剂。这样的瓶子一般我们是用来装些有毒的试剂。因为用完了就可以丢弃。像玻璃瓶倒好像有些舍不得。在买一些试剂盒的时候，我们通常能得到一些这样的瓶子。不妨收集起来，很多时候能派上用场。 二是标签。贴标签是个必不可少的工作。有人喜欢用记号笔写上标签。要注意有油性笔和水性笔两种，前者写出字较牢固，不易洗掉；而后者通常一沾水就踪迹全无。所以注意要用油性笔写。但此法有个缺点，就是下次用此瓶配其它试剂时，字迹不易洗掉，有些麻烦。也可以在纸上写好，然后贴上透明胶。通常我喜欢用宽带的胶，这样可以把整个标签纸都盖住，即使沾了水，也不会对字迹有任何影响。也可以在医用胶布上写上字，贴上去。不过这种方式有时亦可被水弄得字迹不清。这几种方法可酌情选择。 要特别指出的是，标签上一定要写上日期！这样，可以让自己能知道试剂配了多大时间，如果出现问题，有一个证据。也可以让别人知道其大致是否在有效期内。 三是浓度的准确性。浓度要准确，要注意几点。一是正确选择量器。像配对照品溶液，一般是用容量瓶，而且要选合适的规格。配一般的试剂，用量筒。切忌不要用量杯。量杯是很粗略的量器。配体积小的溶液，通常要用移液枪，或微量进样器。二是有些量特别小的试剂（通常是5mg以下），可以直接在其贮存容器里加溶剂。如：PCR、蛋白电泳中某些试剂就是极微量的装在Doff管中，甚至基本看不见。有些在配之前还要高速离心，便极微量的粉末沉积于管底。不然，一打开盖，试剂粉末就损失掉了。三是要注意配好的试剂要冷却到室温最终量取体积才是准确的。如：有些试剂在配制过程中要加热至沸腾，溶剂损失不少，要待其冷却至室温再加溶剂补足。 四是有关特殊要求。有的试剂配制前要加温。如：冰醋酸在温度16度以下，是结成冻块了，要缓缓加温后使用。DMSO也会出现类似现象。有的试剂配好后要求遮光。可选择黑纸或者黑塑料来包裹。有的试剂不是用水来配，而是要别的溶剂。如：PMSF，要用异丙醇来配制。而且是用时再加入水中。因其在水中会较快失效。有的试剂是要求配好后要过滤的。要注意取续滤液。如有失误，宜反复过滤直到符合要求。试制配好后大多数是要求冷藏的，且尽快使用。但也有要求冷冻的，视其具体要求而定。有的试剂是极易氧化的，通常要加抗氧剂。如：6-羟基多巴胺（6-OHDA）,通常是用0.2%维生素C水溶液来配。 关于试剂的使用，我只谈谈原则上的一些注意事项。 一是配好后尽快使用。配好的试剂因大多以液体形式存在，其保质期较原料试剂要短，易失效。因此，要规划好实验后，再开始配试剂，不要把试剂配好老长时间了，才开始做。 二是要注意反复取用试剂时，不要污染。以移液枪取液时，注意更换枪头。以移液管取液时，注意要洗涤，多余的液体不要返回瓶内，而应放掉。 三是在同一个实验中不要用不同批次的试剂。因动物实验中，讲究的就是齐同对比。如果用不同的试剂，结果出来就不知道是什么引起的差异了。所以，配试剂时，尽量配足量，宁愿在一次实验后有剩余，而不能不足。 四是使用别人配制的试剂时，一定要弄清楚来源及相关信息。在同一个实验室，做同一类实验时，我们通常会共用一些试剂。这时，我们一定要注意问清楚。不然，实验出了问题就亏大了。如：做蛋白电泳时，所用的缓冲液，过硫酸铵，丙烯酰胺，都是相同的，只是临用时的配比不同。要注意不要用过期的试剂。 五是试剂用完后，相关器具要洗涤。有些是必须取完后立即洗涤，以免别人或自己在污染的情况下误用。如：丙烯酰胺溶液，有毒。有些是在一小段落后将所用器具洗涤干净。有些残留液体不洗，时间稍隔长一点，就比较难洗了。这是我们应当注意的。在一些实验室，因有一些人要共用一些器具，尤其要注意这一点。就像吃完饭要洗碗一样。这也应是一个良好的实验习惯。 |
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