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动物实验试剂的使用和保存(一些小经验)
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一是配制试剂的容器的选择。通常我们会选择身边一切可利用的容器。用得比较多的是玻璃瓶。小的有青霉素瓶,又称西林瓶。极少量的试剂可以用子弹头型的Doff管来装。大一点的有输液瓶,有100ml,250ml,500ml的不等。酌情使用。比较大的可用装蒸馏水的瓶子,一般有1升到5升,甚至10升的。有时也可用一些高分子材料的瓶子装试剂。这样的瓶子一般我们是用来装些有毒的试剂。因为用完了就可以丢弃。像玻璃瓶倒好像有些舍不得。在买一些试剂盒的时候,我们通常能得到一些这样的瓶子。不妨收集起来,很多时候能派上用场。 二是标签。贴标签是个必不可少的工作。有人喜欢用记号笔写上标签。要注意有油性笔和水性笔两种,前者写出字较牢固,不易洗掉;而后者通常一沾水就踪迹全无。所以注意要用油性笔写。但此法有个缺点,就是下次用此瓶配其它试剂时,字迹不易洗掉,有些麻烦。也可以在纸上写好,然后贴上透明胶。通常我喜欢用宽带的胶,这样可以把整个标签纸都盖住,即使沾了水,也不会对字迹有任何影响。也可以在医用胶布上写上字,贴上去。不过这种方式有时亦可被水弄得字迹不清。这几种方法可酌情选择。 要特别指出的是,标签上一定要写上日期!这样,可以让自己能知道试剂配了多大时间,如果出现问题,有一个证据。也可以让别人知道其大致是否在有效期内。 三是浓度的准确性。浓度要准确,要注意几点。一是正确选择量器。像配对照品溶液,一般是用容量瓶,而且要选合适的规格。配一般的试剂,用量筒。切忌不要用量杯。量杯是很粗略的量器。配体积小的溶液,通常要用移液枪,或微量进样器。二是有些量特别小的试剂(通常是5mg以下),可以直接在其贮存容器里加溶剂。如:PCR、蛋白电泳中某些试剂就是极微量的装在Doff管中,甚至基本看不见。有些在配之前还要高速离心,便极微量的粉末沉积于管底。不然,一打开盖,试剂粉末就损失掉了。三是要注意配好的试剂要冷却到室温最终量取体积才是准确的。如:有些试剂在配制过程中要加热至沸腾,溶剂损失不少,要待其冷却至室温再加溶剂补足。 四是有关特殊要求。有的试剂配制前要加温。如:冰醋酸在温度16度以下,是结成冻块了,要缓缓加温后使用。DMSO也会出现类似现象。有的试剂配好后要求遮光。可选择黑纸或者黑塑料来包裹。有的试剂不是用水来配,而是要别的溶剂。如:PMSF,要用异丙醇来配制。而且是用时再加入水中。因其在水中会较快失效。有的试剂是要求配好后要过滤的。要注意取续滤液。如有失误,宜反复过滤直到符合要求。试制配好后大多数是要求冷藏的,且尽快使用。但也有要求冷冻的,视其具体要求而定。有的试剂是极易氧化的,通常要加抗氧剂。如:6-羟基多巴胺(6-OHDA),通常是用0.2%维生素C水溶液来配。 关于试剂的使用,我只谈谈原则上的一些注意事项。 一是配好后尽快使用。配好的试剂因大多以液体形式存在,其保质期较原料试剂要短,易失效。因此,要规划好实验后,再开始配试剂,不要把试剂配好老长时间了,才开始做。 二是要注意反复取用试剂时,不要污染。以移液枪取液时,注意更换枪头。以移液管取液时,注意要洗涤,多余的液体不要返回瓶内,而应放掉。 三是在同一个实验中不要用不同批次的试剂。因动物实验中,讲究的就是齐同对比。如果用不同的试剂,结果出来就不知道是什么引起的差异了。所以,配试剂时,尽量配足量,宁愿在一次实验后有剩余,而不能不足。 四是使用别人配制的试剂时,一定要弄清楚来源及相关信息。在同一个实验室,做同一类实验时,我们通常会共用一些试剂。这时,我们一定要注意问清楚。不然,实验出了问题就亏大了。如:做蛋白电泳时,所用的缓冲液,过硫酸铵,丙烯酰胺,都是相同的,只是临用时的配比不同。要注意不要用过期的试剂。 五是试剂用完后,相关器具要洗涤。有些是必须取完后立即洗涤,以免别人或自己在污染的情况下误用。如:丙烯酰胺溶液,有毒。有些是在一小段落后将所用器具洗涤干净。有些残留液体不洗,时间稍隔长一点,就比较难洗了。这是我们应当注意的。在一些实验室,因有一些人要共用一些器具,尤其要注意这一点。就像吃完饭要洗碗一样。这也应是一个良好的实验习惯。 |
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