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Catherine92金虫 (小有名气)
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细胞冻存、复苏、计数存活测试及污染处理 已有4人参与
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一般来说,细胞进行转移,最佳的策略是进行低温保存(-70℃~-196℃),而细胞深低温保存的基本原理是:在-70℃以下时,细胞内的酶活性均已停止,即代谢处于完全停止状态,故而可以长期保存。细胞低温保存的关键,在于通过0~20℃阶段的处理过程,在此温度范围内,冰晶呈针状,极易招致细胞的严重损伤。 经过前人的长期试验,发现细胞的冻存及复苏基本原则是慢冻速融,这样可以最大限度的保存细胞活力。 材料准备: 1、仪器:净化工作台、离心机、恒温水浴箱、冰箱(4℃、-20℃、-70℃)、倒置相差显微镜、培养箱、液氮冰箱。 2、玻璃器皿:吸管(弯头、直头)、培养瓶、玻璃瓶(250ml、100ml)、废液缸。 3、塑料器皿:吸头、枪头、胶塞、移液管(10ml)、15ml离心管、冻存管(1~2ml)。 4、其他物品:微量加样枪、红血球计数板、记号笔、医用橡皮膏、移液枪。 5、试剂:PBS,胎牛血清,DMSO,培养液,双抗,胰蛋白酶(0.25%)。 细胞冻存: 目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质能提高细胞膜对水的通透性,加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外,减少细胞内冰晶的形成,从而减少由冰晶形成的细胞损伤。 1、10%的DMSO+90%胎牛血清。甘油一般用于菌种保存很少用于细胞冻存。 2、取对数生长期的细胞,用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来,悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中。 3、离心1000 rpm,5 min。 4、去除胰蛋白酶及旧的培养液,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的最终密度为5x10^6/ml~1x10^7/ml。 5、 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者。 6、冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/min;当温度达到-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h,然后放入-70℃冰箱中过夜,取出冻存管,移入液氮容器内。 细胞复苏: 1、从液氮容器中取出冻存管,直接浸入37℃温水中,并不时摇动令其尽快融化。 2、从37℃水浴中取出冻存管,打开盖子,用吸管吸出细胞悬液,加到离心管并滴加10倍以上培养液,混匀。 3、离心,1000 rpm,5 min。 4、弃去上层清液,加入含10%胎牛血清培养液重悬细胞,计数,调整细胞密度,接种培养瓶,37℃培养箱静置培养。 5、次日更换一次培养液,继续培养。 细胞计数及存活测试: 1、原理: (1)计算细胞数目可用血球计数盘或是Coultercounter粒子计数器自动计数。 (2)血球计数盘一般有二个chambers,每个chamber中细刻9个1mm2大正方形,其中4个角落之正方形再细刻16个小格,深度均为0.1mm。当chamber上方盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为1mm2×0.1mm=1.0x10-4ml。使用时,计数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以104,即为每ml中之细胞数目。 (3)存活测试之步骤为dyeexclusion,利用染料会渗入死细胞中而呈色,而活细胞因细胞膜完整,染料无法渗入而不会呈色。一般使用蓝色之trypan blue染料,如果细胞不易吸收trypan blue,则用红色之Erythrosin bluish。计算细胞活率:活细胞数/(活细胞数+死细胞数)×100%。计数应在台盼兰染色后数分钟内完成,随时间延长,部分活细胞也开始摄取染料;因为台盼兰对蛋白质有很强的亲和力,用不含血清的稀释液,可以使染色计数更为准确。 2、材料: 0.4%w/v trypan blue;Erythosin bluish stain;取0.1gram Erythrosin bluish、0.05gram preservative methyl paraben溶于100mlCa++/Mg++freesaline;血球计数盘及盖玻片(Hemocytometerandcoverslip);计数器(counter);低倍倒立显微镜;粒子计数器(Coultercounter,CoulterElectronics)。白细胞稀释液(4%乙酸溶液)。 3、步骤: (1)取50μl细胞悬浮液与50μl trypan blue(orErythrosinbluish)等体积混合均匀于1.5ml小离心管中。 (2)取少许混合液(约15μl)自血球计数盘chamber上方凹槽加入,盖上盖玻片,于100倍倒立显微镜下观察,活细胞不染色,死细胞则为蓝色(或红色-Erythrosin bluish)。 (3)计数四个大方格之细胞总数,再除4,乘以稀释倍数(至少乘以2,因与trypanblue等体积混合),最后乘以104,即为每ml中细胞悬浮液之细胞数。若细胞位于线上,只计上线与右线之细胞(或计下线与左线之细胞)。 注:4大格细胞总数×稀释倍数×10 4/4=细胞数/ml 每一大格的体积=2.5px×2.5px×0.25px=10-4ml 计数板计数时,最适浓度为5~10×10 5细胞/ml,此范围外计数误差偏大。高浓度细胞悬液,可取出部分作稀释或连续稀释后计数。 ★注意要点 1、冷冻越慢越好,复苏越快越好。 2、与液氮接触的操作,注意戴保护眼镜和手套。细胞复苏时,水浴中摇动小瓶易爆炸。且DMSO为有毒致癌品,接触时带好手套。 3、冻存细胞数量要足够,一般最低要达到5x10^6/ml。浓度视情况而定。 4、做好标记:培养瓶上应该用马克笔做好标记,写上细胞名称、代数和冻存时间。 5、对刚复苏的细胞动作要轻柔,避免细胞破裂。 6、DMSO对大多数细胞不敏感,所以解冻之后不需要除去DMSO,解冻后频繁换液会慢慢除去DMSO。部分对DMSO敏感的细胞需要除去DMSO。 7、解冻后的细胞要用和以前一样的培养液和血清,突然换不一样的培养液和血清会造成细胞生长不良,甚至死亡。 细胞污染除菌步骤: ① Nocard Rid(支原体去除剂) (1)将Nocard Rid与完全培养液按1:800~1000比例稀释,加入细胞正常培养; (2)根据细胞污染的严重程度,处理3~6次即可完全清除细胞支原体污染问题。 ② MycoTest Kit(支原体检测试剂盒) MycoTest Kit是利用降落聚合酶链式反应技术(TD-PCR)对支原体16S rRNA 基因高度保守区域特异性片段进行扩增检测。该方法灵敏度高,特异性强,可用于各种生物材料(如细胞培养基、实验动物分泌物、动物血清等)支原体感染的检测。 ③ Nabact Rid(黑胶虫去除剂) 在细胞培养的时候,有时会在400倍显微镜下看到小黑点在动,小黑点有时呈点状,有时呈小的片状,运动形式为在原地振动(类似布朗运动),这就是黑胶虫。 (1)推荐Nabact Rid的稀释比例为1:500,例如:5 mL培养基加入10 μL的Nabact Rid; (2)弃去旧的培养基,用PBS将细胞清洗干净,再加入新鲜的含有Nabact Rid的培养基,2天1次,连续处理3个周期。 ④ Candida Rid(念珠菌清除剂) Candida Rid 通过特异性的破坏真菌细胞壁的结构,让真菌细胞失去固有形态及完整性,从而影响念珠菌属的正常代谢、离子交换和渗透压,让细胞彻底摆脱念珠菌的困扰,确保细胞的健康生长。 (1) 用PBS冲洗细胞3~5次,每次都从一个方向冲洗倒掉; (2)推荐将Candida Rid与完全培养液按1:500比例稀释,加入细胞正常培养; ⑤ Paebacl Rid(杆菌去除剂) 杆菌(Bacillus Cohn)呈杆状,革兰氏染色阳性、阴性或可变,以周生鞭毛运动。当细胞出现杆菌污染,会在显微镜下看到一些杆状游动的小虫子,对各种抗生素都有很强的耐药性,很难清除,且增殖很快跟细胞竞争营养,培养液不会变混浊。 (1)发现细胞有杆菌污染,弃掉培养基,用pbs清洗3遍; (2)然后按1:1000 比例加入Paebacl Rid 试剂,即:边加边摇匀; (3)每天处理一次,Paebacl Rid 连续处理三天,即可完全清除杆菌污染。 Cell+_细胞房除菌剂 (1)在细胞房及实验室空间,喷两层层即可快速杀灭常见污染源; (2)喷洒本品后,需将细胞房或实验室密闭10-20min后使用。 Cell+_培养箱除菌剂 (1)在CO2培养箱内壁及空间,喷三层即可快速杀灭常见污染源,也可对环境空气灭菌; (2)经试验验证,处理培养箱污染对常见细胞培养无任何影响,无需将细胞移出培养箱; (3)建议CO2培养箱每1-2周处理一次。 Cell+_水盘抑菌剂 (1)首次使用,请先将培养箱水盘清洗干净,然后推荐使用培养箱除菌剂(ZF602)或75%酒精擦拭;最后按照1:100的比例向水盘中加入水盘抑菌剂处理过的水(即:1L水加入10 mL水盘抑菌剂); (2)再次使用,可直接按照1:100的比例向水盘中加入本品,每7-10天处理一次。 Cell+_水浴锅抑菌剂 (1)直接按照1:1000的比例向水浴锅中加入本品,每7-10天处理一次。 文章来源:www.zfdows.com |
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