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[求助]
求助,TTC法脱氢酶活性,酶标仪测定问题
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采用TTC法测脱氢酶活性,遇到一些问题,求助 本人方法如下: 2.1 标准曲线绘制 (1)分别吸取100 μg/mL TTC标准溶液0,50 μL,100 μL,0.5 mL,0.7 mL,1 mL,2 mL,2.5 mL,5 mL,8 mL,于25 mL比色管中,定容至10 mL得标准工作液,使浓度分别为0、0.5、1、5、7、10、20、25、50、80 μg/mL,然后分别取1 mL标准工作液于10 mL带塞试管中(对照管不加TTC,加1 mL蒸馏水代替)。 (2)然后,依次加入2 mL Tris-HCl缓冲液(pH 7. 4),1 mL 10 %硫化钠新配溶液,摇匀,放置20 min;反应完全后,各管分别加入5 mL甲苯,涡旋混匀,完全提取TF,稳定数分钟,取上层有机溶液在酶标仪上483 nm处进行比色分析,绘制标准曲线。 2.2 样品测定方法步骤 (1)称量基质样品1 g于2mL塑料离心管中,依次加入 0.05 M Tris- HCl缓冲液 0.2 mL 0.1 moL/L葡萄糖液 0.2 mL 1% TTC 0.1 mL 置于(37±10)℃恒温箱中遮光培养15 h。 (2)取出样品,加1滴浓硫酸终止反应, 甲苯 准确加入 0.5 mL 涡旋提取1 min,在8000 r/m下离心1 min,取有机溶剂层比色。 问题如下:1、在采用96孔板装待测液体时,一开始加入的乙酸乙酯、丙酮,会腐蚀管壁,形成细纹,影响通透性;而采用甲苯,时间稍长(约几分钟),96孔板变软腐蚀,但还是透明的。想问有没有用酶标仪测过的,分享下提取液的选取? 2、在做标曲时,前面4个点的值偏高,目测是无色的,吸光度有0.1多,空白也有这么高,线性非常差。。是酶标仪的问题吗? 3、恒温箱遮光培养时间,结果跟时间是有关系的?那么如何选择培养时间?有的6h、15h、24h、?? 有做过的分享下经验。。。十分感谢! |
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