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jusperchan

银虫 (初入文坛)

[求助] 蛋白活性实验ELISA检测结果无法解释,求助。 已有2人参与

实验目的:检测某蛋白可以刺激肝细胞内cAMP量上升。
实验过程:
1我们没有正常的肝细胞,于是就拿了HepG2细胞代替肝细胞(我们参考的文献也是用的HepG2)。
2实验具体流程是:培养HepG2,消化
用加血清的培养基稀释到1.5*10^5每毫升;
96孔板中每孔加200ul稀释细胞液,37度培养5h;
吸掉培养液,换成200ul不含血清的培养基,培养24h;
(这个时候观察,基本96孔底部已经被铺满了)
去掉培养基,换成170ul培养基,加10ulIBMX(抑制水解cAMP的酶,从而使cAMP在细胞内累积),加入20ul蛋白样品,另设置溶解蛋白buffer对照组(buffer成分为磷酸盐缓冲液和低浓度氯化钠)。
培养1h,去掉培养基,换成0.1mol盐酸裂解细胞30min,收取上清。
(至此,样品就做好了,接下来的elisa操作全部按照试剂盒要求做的,唯一不同的是,我们怕加盐酸导致pH太低,在样品中加入了磷酸氢二钠中和pH到7左右)
3实验结果:做了好几次,每次buffer对照组的吸光度都比浓度最高的实验组的吸光度高,而且梯度的实验组很难看出趋势。我们的想法是,即使蛋白没有效果,那测的cAMP的量至少应该和仅有buffer的效果一样啊,不会有明显差异的才对。
因为我们在这方面不是专业的,具体方法也是网上找的,请问到底哪一步出现了问题才会有这种结果?(如果实验细节不详细,可以问,我再具体说哈)

[ Last edited by jusperchan on 2015-8-14 at 11:20 ]
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jusperchan

银虫 (初入文坛)

引用回帖:
2楼: Originally posted by Wuyou115 at 2015-08-14 15:04:40
你们设计了实验组和阴性对照组(buffer), 请问有阳性对照组吗?就是用已经报道过可以明显刺激肝细胞内cAMP量上升的物质处理细胞的对照组。。。因为加这个可以确认你们的system有没有没问题。。。

是这样的,阳性对照品要花钱买,太贵了额。。所以我们就想在没阳性对照的情况下做,结果实验数据乱七八糟,完全没有分析价值啊。
4楼2015-08-18 13:52:54
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Wuyou115

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你们设计了实验组和阴性对照组(buffer), 请问有阳性对照组吗?就是用已经报道过可以明显刺激肝细胞内cAMP量上升的物质处理细胞的对照组。。。因为加这个可以确认你们的system有没有没问题。。。
2楼2015-08-14 15:04:40
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673643401

铁虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
阳性对照最好做上,根据你的描述,阴性对照都比实验组的吸光度高,那应该是你elisa的原因(你的操作或试剂盒原因)
3楼2015-08-14 15:41:27
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jusperchan

银虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 673643401 at 2015-08-14 15:41:27
阳性对照最好做上,根据你的描述,阴性对照都比实验组的吸光度高,那应该是你elisa的原因(你的操作或试剂盒原因)

ELISA的问题主要出在哪里呢?我们没专门做过elisa实验。按照他的操作手册上来的,我们没用排枪,都是依次加的,会不会有时间差的问题?还有,显色剂我们是现用现配,配好就用的,避光加有点困难,我们都是正常加进去,然后用锡箔纸抱起来放37里,15min终止,会不会太长了或者曝光了?
5楼2015-08-18 13:55:33
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