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蛋白活性实验ELISA检测结果无法解释,求助。 已有2人参与
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实验目的:检测某蛋白可以刺激肝细胞内cAMP量上升。 实验过程: 1我们没有正常的肝细胞,于是就拿了HepG2细胞代替肝细胞(我们参考的文献也是用的HepG2)。 2实验具体流程是:培养HepG2,消化 用加血清的培养基稀释到1.5*10^5每毫升; 96孔板中每孔加200ul稀释细胞液,37度培养5h; 吸掉培养液,换成200ul不含血清的培养基,培养24h; (这个时候观察,基本96孔底部已经被铺满了) 去掉培养基,换成170ul培养基,加10ulIBMX(抑制水解cAMP的酶,从而使cAMP在细胞内累积),加入20ul蛋白样品,另设置溶解蛋白buffer对照组(buffer成分为磷酸盐缓冲液和低浓度氯化钠)。 培养1h,去掉培养基,换成0.1mol盐酸裂解细胞30min,收取上清。 (至此,样品就做好了,接下来的elisa操作全部按照试剂盒要求做的,唯一不同的是,我们怕加盐酸导致pH太低,在样品中加入了磷酸氢二钠中和pH到7左右) 3实验结果:做了好几次,每次buffer对照组的吸光度都比浓度最高的实验组的吸光度高,而且梯度的实验组很难看出趋势。我们的想法是,即使蛋白没有效果,那测的cAMP的量至少应该和仅有buffer的效果一样啊,不会有明显差异的才对。 因为我们在这方面不是专业的,具体方法也是网上找的,请问到底哪一步出现了问题才会有这种结果?(如果实验细节不详细,可以问,我再具体说哈) [ Last edited by jusperchan on 2015-8-14 at 11:20 ] |
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