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linxiaolin08

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[求助] 关于构建pET28a载体转化后IPTG诱导跑SDS-PAGE胶问题。已有9人参与

试验进行到了IPTG诱导表达后跑SDS-PAGE胶的环节，但是试了很多次了一直失败，我想了很多原因但是都没成功，跪求各位大神给我点指导，再做不出来毕不了业了。

首先，我获得了我的目的基因，与pET28a连接后，成功构建载体。我进行了菌液PCR验证，质粒PCR验证，质粒双酶切验证，之后是送去测序。所有的结果足够表明我已经构建载体成功了。
之后就是转化BL21表达菌株中。转到BL21表达菌株时间大概是15年1月份左右，直到过年后回来开始摇菌，诱导，跑胶，问题就是这时候出现的。
以下是我做试验的整个流程，望大神给些建议。
　　　1、诱导与提取目的蛋白
　　　① 菌种活化。重组载体pET-28a-SAMDC和空质粒pET-28a的单菌落，分别接种于25mL LB液体培养基（KanR）的试管中，37℃，180r/min，过夜振荡培养。
　　　② 菌种扩培。取活化好的菌种按1%的量接种于100mL的LB液体培养基（KanR），摇匀，37℃，200r/min，振荡培养3h。
　　　③ 融合蛋白的诱导表达。向菌液中分别加入终浓度的IPTG（0.1、0.5、1.0 mmol/L）作诱导剂，37℃，180r/min，振荡培养4h（3、4、5、6h）。
④ 目的蛋白的提取。
A. 经诱导后取1mL菌液，4℃ 12000g，10min收集菌体;吸出菌液，用0.5mL预冷的50mmol/LTris-Cl（pH7.4）漩涡振荡使沉淀的菌体复悬，4℃ 12000g，离心10min；再次吸出上清液，小心地吸净管壁上的液滴，尽可能地使沉淀不带有残留的液体；加入100uL ddH2O，漩涡振荡使沉淀复悬，一旦菌体分散开来立即加入等体积的1%×SDS磷酸缓冲液，继续振荡20s；超声波处理。超声处理为7min，超3s，停10s，功率为75w。超声波处理后，样品4℃ 12000g，10min，将上清移至另一管中，沉淀用少量1%SDS溶解，分别加入等体积的2×SDS凝胶上样缓冲液；快速离心，将菌悬液收集在离心管底部，沸水浴中放置5min；分别取15uL样品进行SDS-PAGE电泳检测。
图片即为SDS胶跑完后的状态。我的蛋白预测应该是在40kDa左右，可是在40kDa左右处根本没有我的目的蛋白。反而在30kDa处出现奇怪的条带...
做了几次都是这样的状态。同实验室的也有人在做这一步，她的蛋白预测大小为38kDa，但是跑出来的胶跟我的一模一样。
还有一个同学她是前两次做成功了可以明显看到目的蛋白表达，在60kDa左右，但是从大概4月份开始条带就没有了，我们一直找不到原因，难道这个也是可以传染的？
去问实验室的小老师，老师说可能是我们IPTG诱导的时间有问题，但是按照他说的方法重新试了也不行。难道是因为驯化时间太久所以BL21这个菌太淘气了所以把我们的载体吐出去了？但是这种可能性也不算大啊，我们也没有反复冻融，更何况我们重新验证了，BL21菌株中确实有我们的质粒。现在真的是想不出来到底问题出在哪里。唯一能想到的就是IPTG失效了，下次准备把所有的试剂都重新配一遍，再重新来一次。还有别的什么原因会出现这样的情况么？如果胶做的不对会使条带消失么？？求！！！！！！！！跪求！！！！！！！！谢谢大家了。

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1楼 2015-05-14 09:24:35

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linxiaolin08

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引用回帖:

4楼: Originally posted by 781055707 at 2015-05-14 11:32:08
是什么样的没区别，图上注释一下呗，那个是个，看你这菌是有目的条带的呀。...

从下到上条带顺序依次是：Marker（94kDa，66.2，45,33,26）、转空载体、转SAMDC基因0.1mM IPTG诱导总蛋白，转SAMDC基因0.1mM IPTG诱导上清蛋白、转SAMDC基因0.1mM IPTG诱导沉淀蛋白、转SAMDC基因0.5mM IPTG诱导总蛋白、转SAMDC基因0.5mM IPTG诱导上清蛋白、转SAMDC基因0.5mM IPTG诱导沉淀蛋白、转SAMDC基因1mM IPTG诱导总蛋白、转SAMDC基因1mM IPTG诱导上清蛋白、转SAMDC基因1mM IPTG诱导沉淀蛋白。
33kDa左右处确实是有一条条带，但是大小与我预测的不相符。我的预测大小是40kDa左右，我同学预测大小是38kDa左右，我们俩同时跑胶跑出来的东西是一模一样的，无论是条带的大小，还是条带的颜色深浅，甚至是位置...