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王小七wq

新虫 (初入文坛)

[求助] 包涵体上镍离子柱纯化后,洗脱收集的液体中目的蛋白不见了 已有4人参与

我的目的蛋白带有his标签,8M尿素溶解包涵体,
纯化时binding buffer:7M Urea,100mM NaH2PO4,100mM Tris ,pH8.0;
Washing buffer:8M Urea,100mM NaH2PO4,100mM Tris ,pH6.3;
Elution buffer:8M Urea,100mM NaH2PO4,100mM Tris ,pH4.5;
结果洗脱收集的液体中没有目的蛋白,连strip buffer(EDTA)后收集的液体也没有。
怎么回事,纯化之前蛋白电泳检测是存在目的蛋白的,但纯化后竟然没蛋白了。求助各位大神了
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王小七wq

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
6楼: Originally posted by wolfman840 at 2014-07-16 17:05:52
试试呗,你用EDTA剥了,没见到蛋白,也许意味着酸洗已经下来了。你再做一次全过程样品收集分析,看看情况。我建议用咪唑洗。常用,也比较温和。把尿素的换了试试呗。...

谢谢你的建议。纯化实验新手,所以不太懂,我的蛋白是包涵体,尿素变性,纯化时binding buffer,washing buffer,elution buffer可以不用尿素,只用不同浓度的咪唑吗?
9楼2014-07-17 16:47:54
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王小七wq

新虫 (初入文坛)

自己顶一下,还有变性条件纯化时缓冲液里要加咪咗吗
2楼2014-07-14 11:02:46
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wolfman840

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
看了你的缓冲液组成,有一个可能是,你使用pH值梯度洗脱,在低pH下你的蛋白是否会失活?或者在等电点时沉淀在柱子上无法洗脱?
不过通常我们做HIS蛋白都采用的是咪唑梯度洗脱,你可以考虑将缓冲液中的尿素换成咪唑,从10mM一直拉梯度到500mM试试。
3楼2014-07-14 16:19:34
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王小七wq

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by wolfman840 at 2014-07-14 16:19:34
看了你的缓冲液组成,有一个可能是,你使用pH值梯度洗脱,在低pH下你的蛋白是否会失活?或者在等电点时沉淀在柱子上无法洗脱?
不过通常我们做HIS蛋白都采用的是咪唑梯度洗脱,你可以考虑将缓冲液中的尿素换成咪唑 ...

我在纯化手册中查的缓冲液配方,因为我的蛋白是包涵体,所以选的是变性条件的缓冲液。蛋白质应该不会沉淀到柱子上,我用100mM EDTA剥离镍离子,跑胶也没有目的蛋白。
你的意思是只把洗脱液中尿素换成咪唑?还是再加上咪唑,查资料发现有人咪唑和尿素一起洗脱
4楼2014-07-14 17:06:17
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