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蛋白透析过程中出现浑浊
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| 我的目的蛋白是胞内可溶表达,破菌后离心取上清,将破碎上清对ph7.6的Tris-HCl缓冲液进行透析,透析过程中透析袋内出现浑浊,破菌缓冲液是含0.5M NaCl的ph8.5的Tris-HCl溶液,哪位大侠知道为什么透析过程中为什么会出现浑浊,该如何改进实验方案?! |
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17楼2013-05-13 10:40:45
【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
gyesang: 金币+5, MolEPI+1, 中肯的建议! 2013-05-11 20:43:52
飘零的叶子: 金币+5, ★★★很有帮助 2013-05-12 09:40:06
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gyesang: 金币+5, MolEPI+1, 中肯的建议! 2013-05-11 20:43:52
飘零的叶子: 金币+5, ★★★很有帮助 2013-05-12 09:40:06
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一般我们做蛋白先是破碎,再纯化,然后透析! 虽然不知道你破菌之后,透析蛋白用于干嘛?我猜可能是过阳离子柱是吧? 1).因为你破碎之后,上清中是含有许多种类蛋白的,蛋白浓度越高,protein越容易Aggregated,然后形成沉淀!可能沉淀的并不是你的蛋白,而是杂蛋白! 我经常将一部纯化之后!的蛋白流出,放置在4度,第二天观察发现蛋白变浑浊了,离了心之后,分别取上清与沉淀电泳,结果显示我的蛋白仍在上清! 2).通过透析换buffer来改变pH,可能会改变许多蛋白质的正确构象,使蛋白发生沉淀;也有可能是因为pH的改变刚好经过他的等电点,所以发生了沉淀!如果你的目的蛋白PI值在7.6~8.5之间,那么沉淀的可能是你的蛋白····· 3). 你的破碎buffer中含有500mM的盐,不知道你的透析buffer中含不含有? 总之,我也不知道你沉淀的蛋白是否是你的蛋白,你需要将其离心之后,分别取上清和沉淀跑一次SDS-PAGE! 你的方案得改进: 1. 最好在你的目的蛋白前加个标签,His或GST的。如果就只需要目的protein!!!那就在标签之后加个酶切位点吧!经过一步纯化之后,蛋白的浓度和纯度都会得到提高,一步纯化之后再透析不迟啊! 2.透析还是比较慢的,建议你用脱盐柱G25换你的buffer! 就这么多吧,希望能给你点建议! |

2楼2013-05-11 15:35:50
zhoupeng87
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3楼2013-05-11 15:50:59
4楼2013-05-11 20:44:17










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