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楼1970-01-01 08:00:00

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kakayh

新虫 (初入文坛)

MolEPI: 1
应助: 1 (幼儿园)
金币: 394
帖子: 12
在线: 45.2小时
虫号: 1615432
注册: 2012-02-13
专业: 化学生物学与生物有机化学

【答案】应助回帖

★ ★ ★
小丹木木: 金币+3, 鼓励交流经验 2012-11-10 15:38:01

最近在做293T瞬转，效率蛮高的，可以跟你分享一下经验。使用的是LIPOFECTAMINE 2000（invitrogen公司）
1.首先细胞状态是最最重要的，转染时饱和度一定要90%以上，细胞形态比较好的时候做(一般传代3-4代时最好，不要急于求成)
2.细胞加DNA-lipo-2000复合物之前可以使用opti-MEM洗两遍，非常好用。
3.6小时后，更换含有血清的全培养基。
效果很好的啊，个人感觉还是细胞状态最重要，不要太满，挤的细胞都变形了也不好哦；太稀了容易死

祝你好运！

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3楼2012-11-01 11:15:22

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kakayh

新虫 (初入文坛)

MolEPI: 1
应助: 1 (幼儿园)
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专业: 化学生物学与生物有机化学

【答案】应助回帖

★ ★ ★
小丹木木: 金币+3, MolEPI+1, 热心的虫虫啊 2012-11-10 15:38:22

忘了说，我之前使用的96孔板，误差好大，重复性不好，现在使用6孔板或者60mm小皿，效果都很好细胞几乎不死。
还有一点，就是无血清培养基我一律使用opti-MEM，挺好用的。
我做之前差的，也许对你有用： invitrogen的LIPOFECTAMINE 2000说明书上列举了24孔、12孔、6孔......板的实验体系，因为需要转染的细胞量大，所以一直采用的是6孔版做的转染。以下是以6孔板为例说明一下我的体系和方法吧！
1、转染前一天，以合适的细胞密度接种到6孔培养板上。（我的接种密度是3~4*105/ml.）转染时，细胞要达到90~95%的融合。
2、溶液1：240ul 无血清培养基 + 10 ul lipofectamine 2000 per well （总体积250 ul）（温育5min）
3、溶液2：X ul 无血清培养基 + 4 ug 质粒 per well（总体积250 ul）
4、将溶液1与溶液2混合，室温下置20min。
5、与此同时，将6孔板中的细胞用无血清培养基冲洗细胞两遍后，加入2ml 无血清培养基。
6、将溶液1与溶液2的混合液逐滴加入孔中，摇动培养板，轻轻混匀。在37℃，5％的CO2中保温5~6小时。
7、6小时后，更换含有血清的全培养基，在37℃，5％的CO2中48~72h检测转染水平。
8、如果做稳定转染，换全培养基培养后24h，即可以1：10或更高的稀释比例（根据细胞的生长情况）接种到新的培养板，加抗生素进行筛选。

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4楼2012-11-01 11:24:54

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