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wapw1987

新虫 (小有名气)

[求助] gst标签蛋白的表达和纯化

有没有高人做过GST标签的蛋白的表达和纯化,能不能给点建议,我用的是pGEX质粒,需要在什么菌株中表达,纯化时用什么方法收集提纯呢?
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hustmqx

金虫 (初入文坛)

引用回帖:
10楼: Originally posted by 落明逐暗 at 2011-12-30 09:54:43
其实很简单的,就是隔一个小时或者两个小时取1ml菌液,离心得菌体后直接SDSPAGE上样buffer重悬,然后沸水浴5min,取适量上样,看蛋白大小处的条带量就大概知道了,不复杂。

请问,直接破菌点PAGE胶,条带应该会很杂量很少的吧,这样能看出来吗?
18楼2014-12-11 23:04:44
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Dionysius

木虫 (小有名气)

★ ★
amisking(金币+2): 鼓励积极应助! 2011-12-24 17:29:33
我们表达一般都用BL21菌株,很多生物公司都有蛋白提纯的产品,自己去查一下

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
2楼2011-12-24 10:14:02
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xhjggl

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
可以用GST-SefinoseTM  Resin  BSP031-1
3楼2011-12-24 21:17:50
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hwamg

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
wapw1987: 回帖置顶 2011-12-25 15:12:27
wapw1987(金币+2): ★★★★★最佳答案 2011-12-25 15:31:24
linyingjia(金币+5, BioEPI+1, 专家考核): 很好 2011-12-27 20:30:24
1.        转8ml过夜小摇菌液接入800ml含氨苄的LB培养基(2L锥形瓶), 37度摇菌至OD600至 0.6。
2.        诱导前取1ml菌液,也可使用转入其它质粒的未诱导的BI21菌株作对照。
这是没有诱导的对照,5000rpm,5min去上清,菌体用50 μl SDS loading buffer重悬,放置于-20度备用。
3.        加IPTG诱导蛋白表达,使其中浓度达0.1mM。
4.        室温诱导过夜(8小时左右),取1ml菌液。
这是诱导后的对照,5000rpm,5min去上清,菌体用100μl SDS loading buffer重悬,放置于-20度备用。
5.        使用冷冻离心机4000g,4度离心20分钟,去上清。(除去LB培养基)
6.        将-20度保存的菌体放在冰上15min,用lysis buffer重悬。(1g菌体用2到5ml lysis buffer)
7.        加溶菌酶,使其终浓度达1mg/ml,放置于冰上30min。
8.        超声破碎细胞(冰上进行),工作2s停1s,60s每循环,重复四次。
9.        10000g,4度离心30min。
11. 从上清中取出20μl,加5μl SDS loading buffer,放置于-20度备用。
Beads的预处理:
1)        将600μl 50%的Ni-NTA slurry/ Glutation Sepharose 4B加入层析柱,打开底部的的盖子,除去酒精。
2)        4ml 无菌水洗柱3-4次(间隔:4度 rotate10min)
3)        Lysis buffer 洗柱2次(同上)
12. 将剩余裂解液加0.3ml beads,4度冰箱rotate 2hr。
13. 装柱
14. 用4ml Wash buffer洗beads(目的是洗掉非特异吸附),4度冰箱rotate 10min,重复洗四次,最后一次离心留少许上清。(因为有可能beads对融合蛋白的结合不强,所以每一步都保留上清)
每次洗脱都要取20 μl,加5μl 5*SDS loading buffer。放置于-20度备用。
15. 使用300μl Elution buffer洗柱(可根据情况,适量增加洗脱体积),4度冰箱rotate 10min,重复洗四次,每次都用一个EP管接收。分析每次洗脱的蛋白量,实验要在冰上进行。
每次洗脱都要取5μl,加5μl 2*SDS loading buffer,放置于-20度备用。
16. 10%SDS PAGE检测。
17. 检测蛋白浓度
4楼2011-12-25 01:02:41
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