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【求助/交流】请教关于大肠杆菌lamda RED重组问题已有17人参与
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最近用lamda RED重组敲除大肠杆菌乳酸脱氢酶基因。可是一直出问题,分析不出来问题出在哪里,所以向各位大侠请教。以下是我的实验方法: 1、用带有45bp同源臂的引物,PCR扩增卡那霉素或氯霉素基因; 2、用切胶回收的方法纯化PCR产物,100微升PCR产物最终浓缩为50微升; 3、含有PKD46质粒的E. coli W1485菌株(K-12菌株变种)在LB中培养,OD=0.2时加入L-Ara诱导酶们表达,OD在0.5左右用CaCl2制作感受态; 4、化学转化,而后涂卡那霉素(40ppm)平板; 5、一天后长出几十个菌落(据说RED重组效率很低,只能长出几个菌落来,偶为什么会长这么多?),每个菌落,接到两个平板上,其中一个带氨苄青霉素和卡那霉素抗性,另外一个只有卡那霉素抗性;挑出只在卡那霉素平板上生长的菌株,扩大培养(加了卡那霉素的液体LB培养基); 6、扩大培养的菌提取基因组DNA(电泳的时候没有发现质粒的条带),用PCR扩增卡那霉素抗性基因,扩增不出来…… 为什么出现6这个现象?做了好几组,总是不成功,菌种从W1485换成BL21也不行…… 为什么会有这些假阳性? |
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gandalf886
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1949stone(金币+4): 2010-04-11 18:49
hanjun80(金币+3):多谢热心回复! 2010-04-11 20:10
1949stone(金币+4): 2010-04-11 18:49
hanjun80(金币+3):多谢热心回复! 2010-04-11 20:10
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1、用带有45bp同源臂的引物,PCR扩增卡那霉素或氯霉素基因; 同源臂可以延长。 2、用切胶回收的方法纯化PCR产物,100微升PCR产物最终浓缩为50微升; 你用什么酶P的,文献上说是taq加pfu,DpnI消化降解pKD3/4模板。 3、含有PKD46质粒的E. coli W1485菌株(K-12菌株变种)在LB中培养,OD=0.2时加入L-Ara诱导酶们表达,OD在0.5左右用CaCl2制作感受态; ara浓度是多少,文献说在初始期即加入,1mM或10mM,这要看菌里有没有araBAD这几个基因,另外,一定是30度做感受态,一定是电转。 4、化学转化,而后涂卡那霉素(40ppm)平板; 40ppm是多少,文献是25ug/mL。 5、一天后长出几十个菌落(据说RED重组效率很低,只能长出几个菌落来,偶为什么会长这么多?),每个菌落,接到两个平板上,其中一个带氨苄青霉素和卡那霉素抗性,另外一个只有卡那霉素抗性;挑出只在卡那霉素平板上生长的菌株,扩大培养(加了卡那霉素的液体LB培养基); 这一步没必要,可以先筛到重组子,再去消除pKD46 6、扩大培养的菌提取基因组DNA(电泳的时候没有发现质粒的条带),用PCR扩增卡那霉素抗性基因,扩增不出来…… 不用提DNA,菌落PCR就够了,引物要设在同源臂两侧,而不是用抗性基因引物去P。 |
3楼2010-04-11 18:35:35













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