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蛋白从-20℃拿出来,有沉淀
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杨武哥
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蛋白从-20℃拿出来,有沉淀
已有2人参与
纯化后蛋白保存在负20℃,拿出来解冻后有沉淀出现,离心后测蛋白含量,很低啊!怎么提高其溶解度减少析出?
蛋白新手,跪求
@
gyesang
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1楼
2016-12-29 10:47:40
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杨武哥
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专业: 兽医传染病学
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8楼
:
Originally posted by
十四_14
at 2016-12-29 15:55:56
恩 楼上咸花生说的对 加保护剂是必要的 但楼主要考虑这种保护剂会不会影响后续实验 像我之前做的蛋白 因为后续要做Biacore 甘油会影响结果 所以做之前就要超滤换液把甘油除掉 但是甘油本身超滤的时候比较慢 ...
如果添加蔗糖,添加的量呢?
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9楼
2016-12-29 16:08:53
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云烟渺渺
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★ ★
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2016-12-29 20:06:28
没有做冻融实验就把蛋白冻存了吗?
可以尝试加10%的甘油和1-2mM EDTA,蛋白最好还是保存在-80摄氏度,如果要反复拿出来用就分装几管,反复冻融对蛋白不利,看你的描述不是蛋白析出了,是蛋白沉淀了。
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2楼
2016-12-29 12:02:17
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杨武哥
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专业: 兽医传染病学
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2楼
:
Originally posted by
云烟渺渺
at 2016-12-29 12:02:17
没有做冻融实验就把蛋白冻存了吗?
可以尝试加10%的甘油和1-2mM EDTA,蛋白最好还是保存在-80摄氏度,如果要反复拿出来用就分装几管,反复冻融对蛋白不利,看你的描述不是蛋白析出了,是蛋白沉淀了。
没有做,这个第一次做,不懂怎么保存就直接过镍柱后,全部保存到低温冰箱了。
我试试添加甘油和EDTA。添加甘油的作用我在网上看到,说是因为其粘度大可以防止结构的改变,那么edta呢?
还有人说加DTT,这是什么作用?
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3楼
2016-12-29 14:59:40
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十四_14
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杨武哥: 金币+2
2016-12-29 20:07:00
纯化后的蛋白不要直接冻到冰箱中 首先 既然你是镍柱纯化 那么是用咪唑洗脱的吧?不知道你的咪唑浓度 但纯化后的蛋白溶液最好利用超滤换液除掉咪唑 以防对蛋白造成影响
其次 换液后蛋白可以加入甘油或者蔗糖后冻存 但即便是加了保护剂 也不要反复冻融 可以分装成几管
DTT主要是对含有二硫键的蛋白来说 可以保护其中的二硫键的还原态
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4楼
2016-12-29 15:18:43
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