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凯伦爱佳佳

金虫 (正式写手)

[求助] 就是纯化不出来 已有4人参与

包涵体蛋白。
透析之前检测有条带,透析之后检测有条带,过柱子之后检测无条带,证明蛋白已经挂在了GST柱子上。
用elution buf+谷胱甘肽 洗脱,检测,什么都没有?????没洗掉?浓度低?
往后想做western,蛋白搞不出来,好急啊
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20081118129

新虫 (著名写手)

Drake

引用回帖:
8楼: Originally posted by walking dead at 2016-06-23 14:45:17
试试下面的。平衡(洗涤液)50mM  Tris-Hcl(PH=8.3)的配制:0.1M  Tris溶液50ml,加0.1M  盐酸20ml  0.9g Nacl,加水至100ml;(这里面加盐是为了避免离子作用吸附)
洗脱液  50mM Tris-Hcl+还原型谷胱甘肽(PH=8 ...

你好!我在做GST pull-down实验,有问题想咨询你,希望你能帮助我,谢谢!
9楼2016-06-24 20:26:00
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hc-material

专家顾问 (职业作家)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
洗脱液谷胱甘肽浓度在提高点。还洗不下来,降低洗脱液PH洗,降到3.0,祝顺利
2楼2016-06-20 10:58:50
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wochong

新虫 (小有名气)


【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
蛋白纯化没有蛋白几点原因分析:
(1) 超声功率不对 太大 蛋白炭化 太小 蛋白没有完全释放;策略改变超声功率 超声前加入溶菌酶;
(2)样品或者是结合缓冲液不正确   策略:检测 pH 及样品和结合缓冲液的组成份(EDTA)。
(3)组氨酸的标签没有完全的暴露   策略:在变性条件下(用 8M 脲,6M 盐酸胍,1%SDS) 并加入 1-2mMDTT 进行纯化。
(4)His 标签丢失,策略 1:WB 或者 anti-his 的抗体检查 His 是否表达,上游构建,改变his-tag 的位(C-terminal or N-terminal),必要时增加 his 个数(常用 6-10 个)。
策略 2:孵育的时间不够,降低流速和增加孵育的时间。
策略 3:改变螯合的金属离子,寻找到最佳的结合金属离子。

更多蛋白纯化问题可见:蛋白纯化系统专题

Ni2+通常是从宿主细胞蛋白中纯化大多数(组氨酸)6 标记的重组蛋白质的首选金属离子,也是一般最常用的离子。蛋白和金属离子之间的结合强度受几种因素影响,包括长度、位置、亲和标记在蛋白的暴露程度、所用离子的类型、以及缓冲液的 pH,因此一些蛋白用其他离子可能更容易地进行纯化而不用 Ni2+。可以利用 Hitrap IMACHP 来筛选不同的金属离子,
3楼2016-06-20 16:56:50
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凯伦爱佳佳

金虫 (正式写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by wochong at 2016-06-20 16:56:50
蛋白纯化没有蛋白几点原因分析:
(1) 超声功率不对 太大 蛋白炭化 太小 蛋白没有完全释放;策略改变超声功率 超声前加入溶菌酶;
(2)样品或者是结合缓冲液不正确   策略:检测 pH 及样品和结合缓冲液的组成份 ...

亲,你知道gst标签的么,我不是his标签的蛋白

发自小木虫Android客户端
4楼2016-06-20 17:29:10
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