关于EDC/NHS 反应
请教做过EDC、NHS反应的同学,在羧基修饰的纳米微球上修饰蛋白,以10mg/ml 的EDC和10mg/ml NHS来活化羧基1 h,pH5.0,然后在pH7.2左右加入蛋白,37摄氏度恒温培养2h,但偶联效果一直不太好,请问各位,我的实验过程有什么问题,或者大家有什么好的建议,请帮忙提一下,不胜感激啊 返回小木虫查看更多
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请教做过EDC、NHS反应的同学,在羧基修饰的纳米微球上修饰蛋白,以10mg/ml 的EDC和10mg/ml NHS来活化羧基1 h,pH5.0,然后在pH7.2左右加入蛋白,37摄氏度恒温培养2h,但偶联效果一直不太好,请问各位,我的实验过程有什么问题,或者大家有什么好的建议,请帮忙提一下,不胜感激啊 返回小木虫查看更多
1. EDC反应的最佳条件是pH 4.5 (或者在4-6范围之间),中性条件下效率大大降低。
2.反应时间2h太短了,延长到12h会好很多。
3. 室温足够了。
4.反应完应考虑用透析或柱子把小分子量的脲除掉。
good luck!
楼主可以试试在PBS (pH=7.4, 0.01M)的条件下进行。EDC与Sulfo-NHS的摩尔量比10:1,室温下反应10个小时以上应该足够。EDC在水相会分解的,Sulfo-NHS起稳定作用,所以EDC要过量。你先试试啊,然后再跟我说下管用不。
对了,不用活化1个小时,混在一起同时进行即可。我做的EDC/Sulfo-NHS反应还比较成功
意思是直接将EDC/NHS还有蛋白一起溶解在PBS中然后室温反应12h吗?刚开始做这个实验,很多地方不懂,还请多多指教啊
我是将EDC和NHS溶解在pH5左右的MES溶液中活化羧基,然后移去废液,再将溶解在PBS7.2左右中的蛋白加进去和羧基偶联的,蛋白的反应pH不是应该在偏碱条件下进行的吗,若将偶联反应也在pH5左右进行,偶联效果会不会不好
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活化是在弱酸条件下比较好,酰胺键偶合在弱碱条件下进行,接近中性的环境可以同时兼顾两者。祝你好运啊
嗯,我先试试看,谢谢帮助啦,